• Células de la pared bucal: Los alumnos deben frotar suavemente la superficie interior de su mejilla con un hisopo estéril y luego transferir las células obtenidas a un portaobjetos. Finalmente agregue una gota de azul de metileno espere que seque y elimine el exceso de colorante.

• Observe al microscopio. (Puede usar un mechero para secar la muestra)

• Glóbulos rojos: Utilizando una lanceta estéril, los alumnos deben pinchar su dedo para obtener una pequeña gota de sangre, asegúrese de limpiar la zona del dedo a pinchar y que la persona que realice el procedimiento presente guantes, después no olvide poner parche curita en la herida. Luego, deben colocar una gota de sangre en un portaobjetos y cubrir con un cubreobjetos. (Puede agregar una gota de agua a la sangre para disipar eritrocitos, evita mancharte con sangre)

• Células de la piel: Los alumnos pueden tomar una muestra de células de la piel utilizando cinta adhesiva transparente. Deben presionar firmemente la cinta sobre la piel, luego retirarla y ponerla en un portaobjetos.

  
  

• Adipocitos: Corta una pequeña porción de tocino o panceta con un bisturí o cuchillo limpio. Asegúrate de que el tejido esté fresco y no cocido.

• Fijación con etanol: Coloca la muestra de tejido adiposo en un recipiente adecuado y cúbrelo completamente con etanol al 70% La proporción de etanol debe ser aproximadamente 10 veces el volumen del tejido. Asegúrate de que el tejido esté completamente sumergido en el etanol. Deja que la muestra se fije en etanol durante al menos 24 horas. Durante este tiempo, el etanol penetrará en las células del tejido y las preservará. (Día previo coordinar según grupo de formación diferenciada)

• Lavado con solución salina: Después de la fijación, retira la muestra de tejido del etanol y lávela con abundante solución salina o agua destilada para eliminar el exceso de etanol y evitar que interfiera con las tinciones posteriores. Esto ayudará a eliminar cualquier residuo de etanol que pueda interferir con la tinción y observación de las células.

  
  

• Preparación de la muestra en portaobjetos: Una vez lavada la muestra, coloca una pequeña porción de tejido adiposo en un portaobjetos limpio y seco. Aplasta suavemente el tejido con un cubreobjetos para extenderlo y permitir una mejor observación microscópica.

  
  

• Tinción con Sudan III: Prepara la solución de Sudan III según las instrucciones del fabricante. Cubre la muestra de tejido adiposo con la solución de Sudan Ill y déjala en contacto durante unos minutos (generalmente entre 5 y 10 minutos) para que la tinción se lleve a cabo correctamente. La tinción con Sudan III resaltará las células adiposas, tiñéndose de rojo o anaranjado.

  
  

• Preparación Sudan III (Diluir 0,5 gr de Sudan III en 45,5 mL alcohol etílico) (día anterior)

•Núcleo

•Contorno de la célula

La muestra presentada está al aumento de 40x

Estos hallazgos refuerzan la importancia del microscopio como herramienta fundamental para el estudio de la biología celular, al permitirnos apreciar la diversidad morfológica entre tipos celulares incluso dentro de un mismo organismo. Como sugerencia para mejorar el experimento, sería recomendable utilizar colorantes específicos (como azul de metileno para núcleos), lo que permitiría una identificación más precisa de las estructuras internas. además, trabajar con cortes más delgados y una mejor iluminación ayudaría a evitar distorsiones visuales o artefactos que dificultan la interpretación.

En la imagen se observan células de la piel teñidas de azul. Se pueden distinguir estructuras como la membrana celular y el núcleo. Gracias al colorante, estas células se ven claramente distribuidas sobre una superficie cuadriculada bajo el microscopio. Esta imagen fue observada a 100x

• Estructuras ovaladas con núcleos, correspondientes a las células presentes en l pared bucal

• Células con núcleo visible

• Expectativa: Células planas, grandes, con núcleo visible, organizadas de forma algo suelta.

• Realidad: Se observaron células ovaladas, algunas con núcleo teñido (si se usó azul de metileno). Si forma era compatible con epitelio escamoso.

• Errores o anomalías: Algunas células aparecieron deformadas o superpuestas, lo cual puede deberse al raspado.

• Reflexión: Fue la muestra más clara a nivel celular. Permitió ver núcleos y membranas, lo que valida la preparación. el uso del colorante ayudó mucho.

• expectativa: formas redondas, pequeñas, sin núcleo, con apariencia bicóncava bajo aumento suficiente.

• realidad: se observaron puntos pequeños, rojizos, algunos aislados y otros agrupados. no se distinguió la forma bicóncava con claridad.

• errores o anomalías: la falta de un aumento mayor o la iluminación dificultó ver bien el contorno celular.

• reflexión: se identificaron correctamente como células sanguíneas, aunque con poco detalle. se confirma que la observación fue válida pero limitada por las condiciones ópticas.

• Expectativa: Células compactas, sin espacios visibles, posiblemente en capas.

• Realidad: Se observaron zonas densas, con estructuras más agrupadas que en la muestra bucal, pero sin detalles tan visibles de núcleo o membrana.

• Errores o anomalías: la piel puede contener queratina o restos celulares que dificultan la visión clara.

• Reflexión: Se cumplió parcialmente la expectativa. Se logró ver la textura general del tejido, pero no con la claridad esperada. el experimento fue útil pero podría mejorar si se toma una capa más superficial de piel o se usa mejor tinción.