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      <title>Práctica 3. Electroforesis de ADN  by </title>
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      <description>Hecho con grandes sueños</description>
      <language>en-us</language>
      <pubDate>2022-03-06 16:26:23 UTC</pubDate>
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         <title>Tema: &quot;Electroforesis de ADN de las muestras de ADN de Higuerilla (Ricinus communis L.) UCE_107_34 en gel de agarosa&quot;</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
         <link>https://padlet.com/jfcifuentesl/sof35bnpob695r9m/wish/2080062974</link>
         <description><![CDATA[]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:26:33 UTC</pubDate>
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         <title>Objetivos</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div><strong>General<br></strong>Separar fragmentos de ADN y visualizarlos, mediante electroforesis en un gel de agarosa para su caracterización.<br><strong>Específicos</strong></div><ul><li>Identificar los pasos para realizar una electroforesis.</li><li>Conocer los principios de movilidad de una molécula en un gel de agarosa.</li></ul>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:31:24 UTC</pubDate>
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         <title>Hipótesis y variables</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
         <link>https://padlet.com/jfcifuentesl/sof35bnpob695r9m/wish/2080067473</link>
         <description><![CDATA[<div><strong>HO: </strong>La electroforesis permite identificar la calidad del ADN extraído de las muestras vegetales en estudio.<br><strong>H1:</strong> La electroforesis no permite identificar la calidad del ADN extraído de las muestras vegetales en estudio.<br><br></div><div>Las variables de estudio fueron:<br><br></div><div><strong>Variable dependiente:</strong> calidad del ADN de la muestra&nbsp;</div><div><strong>Variable independiente:</strong> pureza de ADN de la muestra&nbsp;</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:32:50 UTC</pubDate>
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         <title>Desarrollo de la práctica</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:33:21 UTC</pubDate>
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         <title>Informe</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:33:52 UTC</pubDate>
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         <title>Resultados</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
         <link>https://padlet.com/jfcifuentesl/sof35bnpob695r9m/wish/2080068463</link>
         <description><![CDATA[<div>En el experimento realizado, la calidad del ADN extraído de higuerilla (<em>Ricinus cummunis</em>) se examinó mediante electroforesis en gel de agarosa, los resultados mostraron que el control positivo (C+), es decir, la muestra F9P18 correspondiente a una accesión de tomate de árbol (<em>Solanum betaceum</em>), mostró una banda de baja intensidad e indefinida, en comparación con las muestras de ADN de la muestra UCE-107. Para las repeticiones de las muestras de UCE-34 no se apreció ninguna banda y del mismo modo para el control negativo (C-) que fue agua destilada higuerilla (UCE 107 y UCE 34), ya que, solo tres repeticiones produjeron bandas de las mismas características del control positivo, las cuales corresponden a las repeticiones 3, 4 y 5.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:34:07 UTC</pubDate>
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      <item>
         <title>Conclusiones</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
         <link>https://padlet.com/jfcifuentesl/sof35bnpob695r9m/wish/2080068595</link>
         <description><![CDATA[<div>La electroforesis en gel de agarosa permitió observar los fragmentos de ADN de las tres muestras respectivamente, y con ello, identificar los procesos para la realización de esta técnica. Por otro lado, en base a los resultados se concluye que, solo tres repeticiones produjeron bandas de las mismas características del control positivo, las cuales corresponden a las repeticiones 3, 4 y 5 de la muestra UCE-107, en cambio para la muestra UCE-34 no se apreció ninguna banda y del mismo modo para el control negativo (C-) que fue agua destilada.&nbsp;</div><div>&nbsp;</div><div>La baja visualización de las bandas de ADN en la electroforesis se debe a que el ADN puede degradarse mediante reacciones y a factores como la concentración usada tanto para las moléculas de agarosa como en el disolvente, el tamaño de la muestra, su forma, la concentración y la temperatura de la solución amortiguadora, corroborando así la hipótesis nula que establece que la electroforesis permite identificar la calidad del ADN extraído de las muestras vegetales en estudio.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:34:20 UTC</pubDate>
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         <title>1.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
         <link>https://padlet.com/jfcifuentesl/sof35bnpob695r9m/wish/2080079552</link>
         <description><![CDATA[<div>Pesar 0,76 gr de agarosa y transferir a un erlenmeyer de125 ml.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:48:13 UTC</pubDate>
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         <title>2.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Medir 50 ml de buffer TAE y añadir a la agarosa.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:48:23 UTC</pubDate>
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         <title>3.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Calentar en un horno microondas por 2 minutos, hasta que la agarosa se disuelva. Dejar enfriar.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:48:30 UTC</pubDate>
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         <title>4. </title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Añadir 4,5 ul del intecalante SYBR SAFE y mezclar completamente por agitación.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:48:42 UTC</pubDate>
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         <title>5.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Enfriar la agarosa en agua para acelerar el proceso de solidificación. </div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 16:49:09 UTC</pubDate>
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         <title>6.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Prepara la cámara de electroforesis tapando sus paresdes con doble capa de masking.<br>&nbsp;</div>]]></description>
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         <title>7. </title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Vertir la solución de agarosa en el molde de la cámara de electroforesis y esperar a que se solidifique.</div>]]></description>
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         <title>8. </title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Colocar el gel de agarosa para colocarlo en la cámara de electroforesis, sumergiendolo en el buffer TAE.</div>]]></description>
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         <title>9.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Mezclar 5 ul de buffer de carga a&nbsp; 3 ul de las muestras de ADN F9P18, UCE_107 y UCE_34 y agua destilada.<br><br></div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 17:16:24 UTC</pubDate>
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         <title>11.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Conectar la cámara de electroforesis a la fuente de poder de 80 V/h y esperar 45 minutos para que corra la muestra.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 17:24:26 UTC</pubDate>
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         <title>10.</title>
         <author>jfcifuentesl</author>
         <link>https://padlet.com/jfcifuentesl/sof35bnpob695r9m/wish/2080108280</link>
         <description><![CDATA[<div>Tomar con una micropipeta 2 ul de las mezclas de ADN y colocar en los pocillos del gel.</div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 17:25:34 UTC</pubDate>
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         <title>12. </title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Extraer el gel y colocar en el fotodocumentador de geles. </div>]]></description>
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         <pubDate>2022-03-06 17:29:26 UTC</pubDate>
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         <title>13. </title>
         <author>jfcifuentesl</author>
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         <description><![CDATA[<div>Fotografiar y analizar las muestras.</div>]]></description>
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