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      <title>parasitologia by Thaís Francisco</title>
      <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e</link>
      <description>mapa mental</description>
      <language>en-us</language>
      <pubDate>2022-03-26 23:40:15 UTC</pubDate>
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         <title>Técnicas para o exame parasitológico de amostras de fezes.</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
         <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e/wish/2115156544</link>
         <description><![CDATA[]]></description>
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         <pubDate>2022-03-26 23:40:56 UTC</pubDate>
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         <title>Finalidade/Objetivos do Exame de Fezes</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
         <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e/wish/3014467738</link>
         <description><![CDATA[<p>-Diagnóstico de infecções intestinais</p><p>-Detecção de parasitas (ovos, larvas, protozoários)</p><p>- Identificação de bactérias patogênicas</p><p>- Monitoramento da flora intestinal</p><p>-Avaliação de problemas digestivos e de absorção</p>]]></description>
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         <pubDate>2024-05-31 14:21:29 UTC</pubDate>
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         <title>Coleta das Amostras</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
         <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e/wish/3014469047</link>
         <description><![CDATA[<p>-Uso de recipientes estéreis</p><p>-Coleta adequada para evitar contaminação</p><p>-Armazenamento e transporte corretos</p><p>-Coleta em diferentes dias, se necessário</p>]]></description>
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         <pubDate>2024-05-31 14:23:07 UTC</pubDate>
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         <title>Exame Macroscópico</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
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         <description><![CDATA[<p>Observação de características visíveis:</p><ol><li><p>Cor</p></li><li><p>Consistência</p></li><li><p>Presença de sangue</p></li><li><p>Presença de muco</p></li><li><p>Presença de parasitas visíveis</p></li></ol>]]></description>
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         <pubDate>2024-05-31 14:25:47 UTC</pubDate>
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         <title>Exame Microscópico</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
         <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e/wish/3014471799</link>
         <description><![CDATA[<ol><li><p>Preparação de amostras (fixação, coloração)</p></li><li><p>Observação de parasitas sob o microscópio</p></li></ol><ol><li><p>Ovos</p></li><li><p>Larvas</p></li><li><p>Protozoários</p></li></ol>]]></description>
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         <pubDate>2024-05-31 14:26:24 UTC</pubDate>
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         <title>Métodos Qualitativos</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
         <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e/wish/3014477141</link>
         <description><![CDATA[<p><strong>-Método de Sedimentação (Ritchie)</strong></p><p>Princípio: Utiliza a diferença de densidade entre os parasitas e o meio de sedimentação. A amostra de fezes é misturada com uma solução conservante e centrifugada. Os parasitas sedimentam no fundo do tubo, onde podem ser coletados e examinados ao microscópio.</p><p>Finalidade: Detecção de ovos de helmintos e cistos de protozoários, especialmente em amostras com baixa concentração de parasitas.</p><p><strong>-Método de Flutuação (Willis)</strong></p><p>Princípio: Baseia-se na flutuação de ovos de parasitas em uma solução de alta densidade (geralmente uma solução saturada de sal ou açúcar). A amostra de fezes é misturada com a solução de flutuação, e os ovos flutuam para a superfície, onde podem ser recolhidos e examinados.</p><p>Finalidade: Detecção de ovos de helmintos leves, como os de Ascaris lumbricoides e Ancylostoma spp.</p><p><strong>-Método de Faust (Flutuação por Solução de Sulfato de Zinco)</strong></p><p>Princípio: Utiliza uma solução de sulfato de zinco para flutuar os cistos de protozoários e ovos de helmintos. A amostra de fezes é misturada com a solução e centrifugada. Os parasitas flutuam para a superfície, onde podem ser recolhidos e examinados.</p><p>Finalidade: Detecção de cistos de protozoários e alguns ovos de helmintos.</p><p><strong>-Método de Kato-Katz</strong></p><p>Princípio: Envolve a preparação de uma amostra espessa de fezes utilizando uma moldura padronizada e uma célula de gliceraldeído. A lâmina é examinada após um período de tempo, permitindo a visualização dos ovos de helmintos.</p><p>Finalidade: Identificação de ovos de helmintos como Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura e esquistossomose. Este método é semi-quantitativo, mas é frequentemente utilizado para detecção qualitativa.</p><p><strong>-Método de Baermann</strong></p><p>Princípio: Baseia-se na capacidade das larvas de helmintos de se moverem ativamente para fora de uma amostra de fezes quando submersas em água morna. As larvas são coletadas após um período de incubação e examinadas ao microscópio.</p><p>Finalidade: Detecção de larvas de Strongyloides stercoralis e outros nematódeos.</p><p><strong>-Método de Graham (Fita Adesiva)</strong></p><p>Princípio: Utiliza fita adesiva transparente aplicada na região perianal para coletar ovos de Enterobius vermicularis (oxiúros). A fita é então examinada ao microscópio.</p><p>Finalidade: Detecção de ovos de Enterobius vermicularis.</p><p><strong>-Exame Direto a Fresco</strong></p><p>Princípio: Envolve a mistura de uma pequena quantidade de fezes com solução salina ou água destilada em uma lâmina de microscópio, seguida de observação imediata ao microscópio.</p><p>Finalidade: Detecção de trofozoítos móveis de protozoários, cistos, ovos e larvas. É uma técnica rápida e simples, usada para diagnósticos iniciais</p>]]></description>
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         <pubDate>2024-05-31 14:31:47 UTC</pubDate>
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         <title>Métodos Quantitativos</title>
         <author>thaiscfrancisco</author>
         <link>https://padlet.com/thaiscfrancisco/jdnkrir1nmbmox2e/wish/3014478017</link>
         <description><![CDATA[<p><strong>-Método de Kato-Katz</strong></p><p>Princípio: Este método envolve a preparação de uma amostra espessa de fezes em uma lâmina de microscópio, utilizando uma moldura que padroniza a quantidade de fezes analisada. As fezes são cobertas com uma célula de gliceraldeído e, após um período de tempo, os ovos de helmintos são contados.</p><p>Finalidade: É utilizado para quantificar ovos de helmintos como Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, e esquistossomose. É especialmente útil em áreas endêmicas para determinar a intensidade da infecção.</p><p><strong>-Método de Stoll</strong></p><p>Princípio: Este método envolve a diluição seriada de uma amostra de fezes em uma solução salina e, em seguida, a contagem de ovos em uma alíquota conhecida dessa diluição. A quantidade de ovos é então extrapolada para a quantidade total de fezes.</p><p>Finalidade: É utilizado para a quantificação precisa da carga parasitária, especialmente em infecções por helmintos. É um método sensível e pode ser usado para uma ampla gama de parasitas.</p><p><strong>-Método de McMaster</strong></p><p>Princípio: Neste método, uma alíquota de fezes é misturada com uma solução de açúcar ou sal, e a mistura é colocada em uma câmara de contagem de McMaster. Os ovos flutuam para a superfície e são contados sob o microscópio.</p><p>Finalidade: É usado principalmente em medicina veterinária, mas também pode ser aplicado em humanos para a quantificação de ovos de helmintos. É útil para determinar a carga parasitária de forma rápida e eficiente.</p><p><strong>-Método de Dennis, Stone e Swanson (DSS)</strong></p><p>Princípio: Este método envolve a homogeneização de uma amostra de fezes em uma solução de formalina e a filtração da suspensão. A suspensão filtrada é então centrifugada, e o sedimento é examinado ao microscópio para contagem de ovos.</p><p>Finalidade: É usado para quantificar ovos de helmintos em estudos epidemiológicos e clínicos.</p><p><strong>-Método de Técnica de Coproantígeno</strong></p><p>Princípio: Este método detecta antígenos parasitários nas fezes utilizando ensaios imunoenzimáticos (ELISA). A quantidade de antígeno correlaciona-se com a carga parasitária.</p><p>Finalidade: É usado para a detecção e quantificação de parasitas como Giardia lamblia, Entamoeba histolytica e Cryptosporidium spp. É especialmente útil para parasitas que são difíceis de detectar ou quantificar diretamente pelos métodos tradicionais.</p><p>&nbsp;</p>]]></description>
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         <pubDate>2024-05-31 14:32:55 UTC</pubDate>
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         <title></title>
         <author>beatrizferreirajunqueira</author>
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         <description><![CDATA[<p>o</p>]]></description>
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         <pubDate>2024-06-09 13:38:45 UTC</pubDate>
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         <title></title>
         <author>beatrizferreirajunqueira</author>
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         <description><![CDATA[<p>o</p><p><br/></p>]]></description>
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         <pubDate>2024-06-09 13:39:08 UTC</pubDate>
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