Los aditivos que se suelen incluir en las muestras de sangre son el EDTA y la heparina para obtener sangre total anti coagulada. Al añadir citrato trisódico, se obtendrá plasma o sangre total anticoagulada dependiendo de la concentración.

Protección mecánica

• Recipiente primario: Para transportar las muestras de sangre se utilizan tubos, y en su interior se encuentran los aditivos. El color del tapón de los tubos depende del aditivo, características y utilización. EDTA (lila) para hematología y microbiología, citrato trisódico (lila o azul celeste). Además, de los distintos tipos de tubos, existen frascos para hemocultivo cultivos y existen frascos aerobios (tapón azul) y anaerobios (tapón rojo/rosa).

• Embalaje secundario: se pueden utilizar gradillas bolsas de plástico con cierre hermético.

• Embalaje exterior: Caja rígida de cartón o de plástico para evitar golpes y aplastamiento.

Protección física

• Temperatura: las muestras de sangre para hemocultivo se deben enviar lo antes posible y mantenerlas a temperatura ambiente. Nunca refrigerarse ni meter en estufas.

• Protección de la luz: es importante evitar la exposición debido a que muchos análogos son sensibles a ella. Para ello, las muestras se protegen con papel de aluminio o con un material similar.

• Posición vertical: las muestras deben transportarse en posición vertical y con el tapón hacia arriba, para no derramarse.

• Agitación: se debe evitar que las muestras se vean sometidas a agitaciones ya que podrían alterarlas.

• Tiempo: Preferiblemente se deben transportar en periodos cortos teniendo como tiempo máximo 2 horas, pero a partir del momento de la extracción se puede enviar.

  
  

Los aditivos más utilizados son: la solución de formalina al 10 o al 5%, la solución de Merthiolate®-yodo-formaldehído, el fijador de fenol, alcohol y formol, el fijador de glicerina al 50%, el fijador de Schaudinn y el fijador de alcohol polivinílico.

Protección mecánica

• Recipiente primario: Frasco colector estéril con tapa hermética.

• Embalaje secundario: Bolsa plástica sellable o contenedor plástico rígido.

• Embalaje exterior: Caja rígida de cartón, plástico duro o contenedor térmico.

  
  

Protección física

• Temperatura: Se conservan a temperatura ambiente o

  ligeramente frescas, y nunca en estufa ni en nevera, ya que las temperaturas altas o bajas causan la destrucción de muchos parásitos.

• Posición vertical: Los recipientes deben quedar colocados en posición vertical para evitar derrames y contaminación del cierre.

• Agitación: No se debe agitar ya que se pueden destruir estructuras parasitarias delicadas.

• Tiempo: Se remiten al laboratorio inmediatamente para que sean procesadas, aunque también se pueden conservar a temperatura ambiente por un periodo no superior a 24 horas.

Protección química

• Las muestras pueden proceder de cualquier parte del cuerpo y tienen unos requisitos básicos de conservación comunes. Las soluciones más utilizadas para preservar las muestras de citologías y biopsias son la solución de formol al 5-10% y la solución de alcohol al 70%.

  • Requisitos específicos: Para las biopsias renales y cutáneas a las que se le aplicará un estudio de innmunofluorescencia deben remitirse en fresco protegidas por papel de filtro empapado en suero fisiológico frío.

  • Las piezas quirúrgicas de intervenciones de urgencia o fuera del horario laboral deben sumergirse en formol, con una proporción mínima de 1:20 entre el volumen del tejido y el del formol. En este caso, queda a criterios del cirujano la decisión de abrir o no la pieza si considera que es la única forma de garantizar una fijación adecuada.

  
  

  Protección mecánica

  • Recipiente primario: Se depositan en un tubos estéril con medio de transporte de anaerobios.

  • Embalaje secundario: bolsa de plástico con cierre hermético o contenedor.

  • Embalaje exterior: caja rígida acolchada para transporte.

  
  

  Protección física

• Temperatura: Si el transporte no es inmediato, deben mantenerse a temperatura ambiente hasta su envío al laboratorio.

• Protección de la luz: Se recomienda evitar luz solar directa prolongada para preservar la integridad del recipiente y evitar evaporación del formol.

• Posición vertical: la muestra debe estar completamente sumergida, ene l caso de que lleve formol o alcohol.

• Agitación: No agitar el frasco, puede fragmentar el tejido causar la formación de burbujas, lo que podría interferir en la fijación.

• Tiempo: debe ser inmediato para biopsias renales o cutáneas a las que se le aplicará un estudio de inmunofluorescencia o se vaya a visualizar mediante microscopio electrónica.

• Presión: no aplicar presión ni comprimirla contra las paredes de una frasco. Evitar depositar la muestra en recipientes pequeños.

  
  

  
  

Las soluciones más usadas para preservar muestras de citologías son la solución de formol al 5 o al 10% y la solución de alcohol al 70%.

Protección mecánica

• Recipiente primario: Frasco recolector de orina estéril.

• Embalaje secundario: Un saco de plástico con cierre hermético y absorbe líquidos o un contenedor irrompible con tapa de rosca.

• Embalaje exterior: Caja rígida o contenedor externo.

Protección física

• Temperatura: Puede ser ambiente (18-30ºC) o refrigerada (4-8ºC) según el tipo de muestra, si se han usado aditivos y el tiempo que va a transcurrir hasta la entrega en el laboratorio.

• Protección de la luz: Depende del tipo de analito que se vaya a analizar.

• Posición vertical: Es importante que los envases se mantengan bien tapados y en posición vertical, para evitar vertidos accidentales al tener esta muestra un gran volumen.

• Agitación: La agitación puede destruir células y afectar la calidad del frotis citológico.

• Tiempo: Máximo 2 horas y si se va a superar este tiempo, se refrigeran.

• Presión: Evitar presión mecánica o compresión del recipiente, ya que puede romperlo o dañar las células presentes.

Para bacterias se distingue entre medios para aeróbicos y

medios para anaeróbicos, en los que puede conservarse una amplia variedad de microorganismos. También es posible recurrir a medios enriquecidos específicos para un tipo concreto de microorganismo.

Protección mecánica

• Recipiente primario: Hisopo estéril con medio de transporte Stuart o Amies.

• Embalaje secundario: Contenedor rígido o bolsa de seguridad a prueba de fugas.

• Embalaje exterior: Caja rígida de cartón, plástico o metal.

Protección física

• Temperatura: Entre 2°C y 8°C, es decir, refrigerado para preservar la viabilidad bacteriana.

• Protección de la luz: Guardar en bolsa opaca o caja cerrada si es posible.

• Posición vertical: Mantener el tubo con el hisopo en posición vertical para evitar derrames.

• Agitación: El hisopo debe mantenerse estable para evitar daño a los microorganismos.

• Tiempo: Debe analizarse dentro de las 24 horas posteriores a la toma. Si es posible, enviar al laboratorio en menos de 2 horas desde la toma.