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Son un molusco bivalvo  de la familia de las Ostreoida. Su medio natural es unida a las rocas o enterradas en la arena o cascajo de la zona infralitoral. Vive hasta los 80 metros de profundidad. Su coloración puede ser gris, verdosa o pardusca, más o menos teñida de marrón o violeta.

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Semillas captadas Isla Santa Maria

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Colector Japonés usado para captar semillas de ostion. 

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Colector Japonés usado para captar semillas de ostion. 

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Las bolsas colectoras se suspenden en la columna de agua, dutante los periodos de mayor abundancia de larvas de la especie

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Los dos tipos principales de ostras, Ostrea y Crassostrea, tienen diferentes hábitos de reproducción. En la Ostrea, cuando las huevas se desprenden de la gónada, son retenidas en la cavidad del manto dentro de la concha, mientras que los espermatozoides son descargados externamente. Las huevas son fertilizadas por la esperma desde afuera y cerca de la mitad de la vida larval se desarrolla dentro de la concha antes de ser soltadas en el agua. En la ostra Crassostrea en el momento del desove, tanto las huevas como los espermatozoides son descargados directamente por fuera dentro del agua en donde se realiza la fertilización y todo el desarrollo subsiguiente.

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Crassostrea gigas

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Descripción e imagen de Mytilus chilensis 

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Descripción e imagen de Mytilus chilensis 

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El chorito es una especie endémica que se distribuye desde Arica al Cabo de Hornos, además se encuentra por el atlántico hasta las Islas Malvinas, habita zonas de altas salinidades y ambientes salobres, donde se alimenta principalmente de microalgas mediante filtración.

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Los mitílidos pertenecen al Filo Mollusca, Clase Bivalvia, Subclase Pteriomorphia, de orden Mytiloida y de la familia Mytilidae, se conocen comúnmente como mejillones o choros, son moluscos bivalvos, exclusivamente de ambientes acuáticos marinos tanto en zonas intermareales y en profundidades a nivel global. La forma de sus conchas son generalmente triangulares, en su parte externa son de color pardo oscuro a violáceo, internamente son nacarados de color claro. El cuerpo de los mitílidos es blando y esta cubierto por un manto el cual envuelve los órganos internos.

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La cholga es un organismo bentónico ubicado en la costa, viven adheridos a sustratos duros y rocosos, se alimentan de fitoplancton y detritos orgánicos. Su distribución se encuentra principalmente en Perú, Chile, Argentina y el sur de Brasil.

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Los mitílidos liberan sus óvulos y espermatozoides al agua, en donde se produce la fertilización, aquí comienza la vida de un nuevo individuo el cual  no posee una concha y tampoco se alimenta del medio, este organismo es nombrado como larva trocofora, con el paso del tiempo sigue desarrollándose a una larva veliger, en esta etapa el organismo ya posee una concha, se alimenta del medio y nada con ayuda de una estructura denominada velo, el desarrollo es continuo y aquí alcanza un estado denominado pediveliger o premetamorfico, este individuo tiene una tamaño que varia entre 240 a 300 µ  , a la vez posee un pie móvil, mancha ocular y el velo continua, pero con el tiempo lo va perdiendo, con el pie se moviliza y busca un sustrato al cual se fija, al encontrarlo adquiriendo el aspecto externo de un adulto recibiendo el nombre de postlarva, desde este momento se dedica a crecer.

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Criterio de identificación de larvas de mitílidos Aulacomya según estado

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Criterio de identificación de larvas de mitílidos Aulacomya según estado

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Larva D(veliger): es una larva con alto interior mucho mas ancho, desde la zona media hacia la charnela.

Larva Umbonada: Larva de forma ovalada, mas redonda, asimétrica.

Larva Pediveliger:  En esta larva ya existe un ojo marcado, asimetría leve, umbo levemente sobresaliente.

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Vista externa de valva derecha de larva de Aulacomya ater, 1=340µm

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Vista externa de valva derecha de larva de Aulacomya ater, 1=340µm

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Charnela de valvas derechas de larvas de Aulacomya ater, 1= 340 µm

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Charnela de valvas derechas de larvas de Aulacomya ater, 1= 340 µm

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Vista externa de valvas derechas de la larva y postlarva Aulacomya ater, 1= 255 µm

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Vista externa de valvas derechas de la larva y postlarva Aulacomya ater, 1= 255 µm

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Charnela de valvas derechas de larva y postlarva de Aulacomya ater, 1= 255 µm

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Charnela de valvas derechas de larva y postlarva de Aulacomya ater, 1= 255 µm

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Tienen un tiempo de desarrollo que va desde la fertilización hasta llegar al estado de postlarva de 25 a 30 días, dependiendo de las condiciones ambientales a las que se encuentre, estos organismos, encontrándose en ambiente natural, pueden demorar de 2 a 3 años en conseguir su tamaño comercial.

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Estados de desarrollo larval de Crassostrea Gigas

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Estados de desarrollo larval de Crassostrea Gigas

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Es una especie ovípara asíncrono dicogamica. Los adultos pueden cambiar de sexo con el tiempo, con un primer ciclo reproductivo como machos.

Tiempos de desarrollo:

El huevo toma 6 horas en convertirse en una larva trocófora, luego a las 24 horas ya evoluciona a Larva D. A los 2 días se convierte en Larva veliger, etapa en la que pasa 20 días para hacer su metamorfosis y desde el día 20 a la cuarta semana ya es una semilla.
Caracterizacion larval:

Una vez que ocurre la fecundación del ovocito, este pasa por las fases multicelulares de blástula y gástrula hasta convertirse en una trocófora con motilidad. La embriogénesis es llevada a cabo debido a las reservas derivadas de los padres, éstas son catabolizadas hasta la etapa de Larva-D, 24 hrs post fertilización

En el día 6 ya puede  realizar alimentación exógena.

La larva D forma la prodisoconcha y su tamano es de 80 𝜇m, también posee un velo para la alimentación y locomoción.

Al desarrollarse, cambia su forma y aparece una estructura en forma de gancho llamada umbo.

Al alcanzar los 250-280μm aparece una mancha ocular a cada lado del cuerpo, entre la glándula digestiva y las valvas, en señal de que procederá a la búsqueda de sustrato. Este es el estado de Velíger competente.

Luego ocurre una reorientación de las estructuras internas, aumenta la complejidad de los sistemas de órganos,  se forma la concha adulta, desaparece el pie, se degenera el velo y se desarrollan branquias ciliadas que serán su nuevo método de alimentación. Ahora es una postlarva.

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Presentan en sus primeros estadios una concha larval convexa con un provínculum casi recto. Cuando esta se encuentra en un estado larval más avanzado, su borde anterior es levemente más agudo que el posterior y el borde dorsal del umbo se curva. Su interior es blanco y entre las impresiones musculares y el borde es nacarado azul plateado.            La unión ambos gametos origina una primera larva, esta no posee ni concha ni tampoco se alimenta del medio (larva trocófera). Luego esta primera larva se transforma en una larva veliger; esta se caracteriza por poseer una concha y alimentarse, también puede nadar con la ayuda de una estructura llamada velo. El periodo de desarrollo larval de este tipo de chorito se extiende por 19 a 45 días.

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Mytilus chilensis. Tamaño aproximado 115 x 85 mm. Este estado de desarrollo se alcanza alrededor se alcanza alrededor de los 2 a 3 días después de la incubación de los huevos fecundados.

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Mytilus chilensis. Tamaño aproximado 126 x 99 um. Este estado de desarrollo se alcanza alrededor de 7 días después de realizada la fecundación.

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Mytilus chilensis. Tamaño aproximado 133 x 108 um. Este estado de desarrollo se alcanza alrededor de 9 días después de realizada la fecundación.

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Mytilus chilensis. Tamaño aproximado 172 x 143 um. Este estado de desarrollo se alcanza alrededor de 15 días después de realizada la fecundación. Se observa que la larva pierde la forma recta de la charnela y comienza a umbonarse.

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Mytilus chilensis. Tamaño aproximado 219 x 187 um. Este estado de desarrollo se alcanza alrededor de 22 días después de realizada la fecundación. Se observa que el umbo en la charnela está bien definido.

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Mytilus chilensis. Tamaño aproximado 242 x 211 mm. Este estado de desarrollo se alcanza alrededor de 24 días después de realizada la fecundación.

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Características etológicas de larva pediveliger

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Características etológicas de larva pediveliger

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Luego de la etapa larval veliger el organismo llega a un estado llamado premetamórfico o más conocido como Pediveliger, esta larva se caracteriza por tener un diminuto tamaño que va desde 240 a 300µ, un pie móvil, mancha ocular y un velo que pierde a medida que va llegado a la adultez. El pie le ayuda a moverse en busca de sustrato, cuando lo encuentra se fija a él, adquiere un aspecto solo externo de un mitílido adulto (postlarva), para crecer hasta su talla adulta.

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Existen tres especies que se colectan de manera mas frecuente en nuestro territorio.
Ostión del norte (Argopecten purpuratus)
Ostra japonesa (Crassostrea gigas)
Ostra Chilena (Ostrea chilensis)

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El periodo de extracción de la ostra japonesa o crassostrea giga es durante todo el año debido a su potencial de rápido crecimiento (6 a 18 meses) y su gran tolerancia a las condiciones ambientes.

El periodo de extracción de la ostra chilena u ostrea chilensis es durante todo el año y con una talla mínima de extracción de 5cm de altura de valva, debido al desmonte de bancos.

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El ostión japonés es una especie estuarina, prefiriendo sustratos firmes del fondo donde se llevan una existencia sedentaria adheridos a las rocas, desechos y conchas desde la zona intermareal más profunda hasta profundidades de 40 m. Está distribuida por el océano pacifico, en Japón, Corea y china.
El tamaño comercial de la ostra japonesa es de 8 cm, y el de exportación 15 cm; esta medida es alcanzada luego de 2 a 3 años y medio de crecimiento en cultivo.

La distribución de geográfica de este molusco abarca Chile y Nueva Zelanda, siendo en el sur de nuestro país donde se pueden encontrar, principalmente en el Norte de la isla de Chiloé y las islas Guaitecas en la región de Aysén. Normalmente se encuentra a este animal formando bancos en el tercio interior de la línea intermareal hasta una profundidad de aproximadamente 8 m. la ostra chilena puede ser fijada por su valva inferior a sustratos duros, formando así agrupaciones densas que cubren grandes superficies del fondo marino.
El tamaño comercial de las ostras chilenas es de 5 cm, y el de exportación de 7cm. Esta medida es alcanzada luego de 3 a 4 años de crecimiento en cultivo.

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Tiempo de instalación, crecimiento y problemas del proceso

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Tiempo de instalación, crecimiento y problemas del proceso

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El promedio de instalación del cultivo es de 6 a 18 meses. Cabe destacar que este periodo es variable, ya que puede surgir problemas que retrasen el proceso de la ostra japonesa.
La ostra japonesa demora alrededor de 2 a 3años y medio en alcanzar su talla de exportación. El crecimiento se puede ver afectado por varios factores, ya sea por la alimentación que se les suministre, la salinidad y la temperatura del agua.
El problema del cultivo de la ostra japonesa son 3 factores más relevantes.
competidores, ya que hay organismos que compiten por el espacio y por la alimentación.
sedimento, por mucha acumulación de lodo hace que sea un lugar apropiado para los gusanos que realizan cuevas en las conchas de las ostras.
y por ultimo los depredadores, existen diversas especies que son consideradas dañinas para las ostras(jaibas, caracoles, gusanos y peces); Estos factores son lo que se corren el riesgo por cultivar una especie en áreas naturales.

La duración promedio de la instalación de un cultivo es de 24 meses, sin embargo, este es un periodo variable, ya que pueden surgir problemáticas de improvisto que retrasen el proceso.
La ostra chilena demora alrededor de 3 a 4 años en alcanzar la talla de exportación. Su velocidad de crecimiento se ve afectada por la calidad de alimento que se le suministre, es decir, al valor nutritivo de las especies que componen su dieta, la ración suministrada, la salinidad y la temperatura del agua.
El problema del cultivo de la ostra chilena es su baja tasa de crecimiento. Estos moluscos demoran 36 meses en alcanzar su talla de exportación, lo que significa una inversión muy extensa para los centros de ostricultura. Es por esto también, que los ostricultores eligen demostrar los bancos naturales de ostras en lugar de cultivarlas.

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Captación de semillas mytilus chilensis: 

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Captación de semillas mytilus chilensis: 

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La miticultura es una de las actividades acuícolas de mayor importancia a nivel nacional, incluso actualmente Chile es considerado el principal exportador de mitílidos a nivel mundial. Se desarrolla en su mayoría en la región de Los Lagos a través de la captación de semillas, que corresponde a la primera etapa dentro del cultivo de mitílidos. Esta se lleva a cabo principalmente en la época de otoño. Cabe destacar que el mejillón chileno alcanza su talla de exportación (5-6 cm) en un tiempo estimado de 18 meses.

Dentro de los sistemas de cultivo existen diversos tipos de métodos para el cultivo de esta especie, como es el caso de el cultivo en estacas, cultivo de fondo y el cultivo de sistemas suspendidos. En este ultimo se encuentran las balsas y long-line, donde en ambos casos los choritos permanecen en la columna de agua para filtrar una mayor cantidad de alimento y así poder obtener un crecimiento óptimo. En el caso de nuestro país, los cultivadores utilizan mayoritariamente long-line.

Para que la actividad de captación de semillas se debe tener la autorización de la Subsecretaría de Pesca. Para un mejor rendimiento de la semilla se deben tener en consideración diversos factores, como lo son los factores ambientales, biológicos y de administración. Durante este proceso se obtienen las semillas (con un diámetro de 2 a 3 cm de longitud aprox) y con eso se da inicio al ciclo productivo. Estas pueden ser obtenidas desde medio natural o en su defecto por medio de la producción artificial. La más utilizada suele ser la captación por medio natural ya que esta es una alternativa fuertemente más económica, pero sin embargo más imprecisa, ya que la cantidad de semillas a obtener depende en su totalidad de las condiciones ambientales. Por otra parte, en la producción artificial las semillas permanecen en un ambiente controlado (hatchery), evidentemente de un costo mucho mayor, pero da como ventaja de asegurar el stock de producción.

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La temperatura, salinidad y disponibilidad de alimentos son factores de gran influencia en el ciclo reproductivo de las ostras. Usualmente se da desde septiembre a noviembre.

En el comienzo del invierno la gametogénesis se reduce, pero aumenta al final de la temporada. En la primavera se acelera el desarrollo de células germinales para alcanzar la madurez sexual a inicios del verano.

Durante el verano, un estímulo externo lleva a la expulsión  total o parcial de los gametos hacia el medio.

Las reservas energéticas se reponen en otoño, antes de un nuevo ciclo reproductivo.
Imagen: Ostras en  A: con huevo, B: véliger; C: con ojo)

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Características etológicas de la larva pediveliger

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Características etológicas de la larva pediveliger

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La larva pediveliger posee una mancha ocular altamente fotosensible y un pie que le otorgará la facilidad para asentarse. Si al nadar por el medio marino, la larva choca con algún objeto limpio y duro como una concha de ostra o una raíz de mangle, comienza a arrastrarse. Cuando encuentra un punto apropiado, con frecuencia una hendidura pequeña, una glándula que tiene en su pie segrega una especie de cemento hacia la cual se arrastra con su valva izquierda o acopada hacia abajo. El cemento se endurece rápidamente y la ostra se adhiere entonces de por vida. Este proceso es el asentamiento o fijación y la ostra joven se ha convertido en una ostra semilla.

Estudios sugieren que, además, las larvas pediveliger son capaces de captar señales químicas liberadas por congéneres adultos que pueden actuar como atrayentes e inducir un comportamiento de asentamiento, lo que puede implicar que las semillas se depositan con mayor frecuencia en los arrecifes de ostras silvestres en la superficie bentónica. Sumado a esto, se ha estudiado también la respuesta de la pediveliger de Crassostrea virginica ante las características acústicas de los hábitats marinos, sugiriendo que son capaces de identificar los sonidos de un arrecife de ostras para efectos de reclutamiento y asentarse en lugares favorables, prefiriéndolos sobre los sonidos de un fondo blando no estructurado o un lugar sin ningún sonido.

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dentro del ciclo de vida de las especies se piensa que la mayor mortalidad afecta a los individuos durante la primera fase de desarrollo, entonces lo que hace un colector de semilla es poder rescatar aquella fracción de individuos que van a morir por variables medio ambientales que generan esta mortalidad de forma natural.
En otras palabras un colector es un sistema de captación en donde se retiran las semillas que no sobreviven en el medio ambiente.
La semilla para cultivo en el medio natural se obtiene de colectores específicos, según su periodo reproductivo, ambiente, zonas de fijación, temporada de desove.
Los colectores para semillas se instalan en sistemas flotantes como balsas o líneas de cultivo denominado comúnmente como long-line.

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Sistema de captación de semilla en ambiente natural

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Sistema de captación de semilla en ambiente natural

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Sistema de producción de semilla en ambiente natural

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Este sistema se trata de recolectar un determinado número de conchas madre (ya sean de las mismas ostras o también puede ser de mejillones) estas son perforadas en el centro de la valva y ensartadas con un alambre galvanizado de 4mm de diámetro por 2m de longitud en donde se separan por un tubo de material plástico de 4cm de largo y se cuelgan a estacas de madera o cuerdas en el intermareal.

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Para esto también se recolecta un determinado número de conchas madre dentro de un saco de malla de netlón.
Estas bolsas se cuelgan en una estaca de madera en el intermareal.

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consiste en tejas encaladas y apiladas en grupos, sostenidas por una estaca de madera o dentro de una estructura del mismo material que impide el contacto directo con el fondo (variando en función de las características y áreas de captación).

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Las sartas son elaboradas con un hilo de polietileno, donde se van ensartando conchas vacías de ostras o de ostros moluscos, una por una y dejando un espacio de 10cm de separación entre ellas. la longitud de las sartas va de 1,5 a 2,5 m dependiendo de la profundidad de la zona a cultivar.
Las sartas son colocadas en estructuras fijas o en estructuras flotantes o balsas.

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Este tipo de colector es más actualizado, se utilizan mallas como sustrato para las ostras, estas son de 15 cm de ancho por 1 m de longitud, estas son introducidas en otro tipo de malla de polietileno, van colgadas a un tubo de agua blanca y este a una cuerda con peso muerto abajo para que la corriente no las saque de donde están.

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Ventajas y desventajas de colectores artificiales

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Ventajas y desventajas de colectores artificiales

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Características estados de competencia larval 

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Características estados de competencia larval 

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Son larvas pelágicas que pasaran a un sustrato
1-ovocito

2-blastula, gástrula

3-larva trocófora

4-larva veliger de estado temprano

5-larva umbonada

6-larva pediveliger

Por ejemplo:
ESTADO LARVAL C.GIGAS
Son larvas planctotroficas, es decir, filtran el agua para obtener su alimento. A continuación se nombra el estado larval y sus características.
1- La larva trocófora es la primera larva del ciclo y posteriormente origina una larva veliger que es un estado temprano de desarrollo, larva "D", esta primera larva está constituida por la pro-isoconcha 1. Avanza en su desarrollo y genera pro-isoconcha 2 pero sigue siendo una larva veliger.

2- Larva veliger umbonada, se parece a una pequeña semilla, luego cuando genera el pie se llama larva pediveliger, este pie le sirve para moverse hacia el sustrato donde se fijará, posee un velum y aparece la mancha ocular que es un criterio previo a la metamorfosis.
Larva pediveliger buscará un sustrato a través del pie y se acerca a la metamorfosis
3-Una vez ya fijada, se denomina postlarva pro-isoconcha 1 y 2, además de generar la primera concha de su forma adulta disoconcha

En cuanto al tiempo del ciclo, este depende de la temperatura del agua y del alimento disponible para las larvas.
Resumiendo, los procesos por los que pasa la larva para llegar a los colectores son los siguientes

-->desoves: Gana importancia la magnitud, es decir la cantidad de larvas y estacionalidad
--> Pool larval: donde es indispensable la alimentación adecuada de larvas, la sobrevivencia a la depredación y a la deriva en la columna de agua
--> transporte larval: influenciado por mecanismos físicos, el comportamiento larvario que determinara el asentamiento en el sustrato
-->asentamiento: influenciado por la  microhidrodinámica, comportamiento de la larva y el sustrato disponible
--> post asentamiento: en relacion con las interacciones biológicas, los disturbios físicos presentes y la experiencia larvaria.

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https://agrotendencia.tv/agropedia/cultivo-de-la-ostra/

https://www.jica.go.jp/project/elsalvador/2271029E1/materials/pdf/2007/2007_04.pdf

http://www.acuiculturaenareasdemanejo.cl/wp-content/uploads/2017/08/Cultivo_de_Ostras-UCN-Luis-Pereira.pdf

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Lillis A, Eggleston DB, Bohnenstiehl DR (2014) Correction: Oyster Larvae Settle in Response to Habitat-Associated Underwater Sounds. PLOS ONE 9(1): 10.1371/annotation/b04bc087-808a-4edc-ae2a-08932bff360c. https://doi.org/10.1371/annotation/b04bc087-808a-4edc-ae2a-08932bff360c

Luke A. Poirier, Jeff C. Clements, John D.P. Davidson, Gilles Miron, Jeff Davidson, Luc A. Comeau,

Sink before you settle: Settlement behaviour of Eastern oyster (Crassostrea virginica) larvae on artificial spat collectors and natural substrate, Aquaculture Reports, Volume 13, 2019, 100181, ISSN 2352-5134, https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2019.100181.

(https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S235251341830156X)

Quayle, D.B. (1981) Ostras tropicales : cultivo y métodos. Ottawa, Ont., CIID, 1981. 84 p. il. https://idl-bnc-idrc.dspacedirect.org/bitstream/handle/10625/2544/IDL-2544.pdf?sequence=1

Tillería, J.(2011) Estudio de la captación natural del recurso ostra chilena, Ostrea chilensis (Philippi, 1845), en la reserva marina de Pullinque, utilizando dos tipos de colectores. http://bdrnap.mma.gob.cl/recursos/SINIA/Biblio_AP/070316BIBLIORNAP_157.pdf

FAO. 2009. Crassostrea gigas. In Cultured aquatic species fact sheets. Text by Helm, M.M. Edited and compiled by Valerio Crespi and Michael New. http://www.fao.org/fishery/docs/DOCUMENT/aquaculture/CulturedSpecies/file/es/es_pacificcuppedoyster.htm

Pacheco, N. (2016). Protocolos innovadores de criterios de calidad larvaria de ostión japonés que permitan incrementar el rendimiento en cultivo y mejorar los sistemas de producción de semilla.

https://cibnor.repositorioinstitucional.mx/jspui/bitstream/1001/47/1/pacheco_n.pdf

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https://www.subpesca.cl/portal/616/w3-article-845.html

https://smach.cl/historia-de-la-ostra-chilena/

Estudio de la captación natural del recurso ostra chilena, Ostrea chilensis (Philippi, 1845), en la reserva marina de pullinque, utilizando dos tipos de colectores. 2011. Universidad Austral de Chile. pag. 9-11, 20-22, 25

Dinámica poblacional de la Ostra Chilena (Ostrea chilensis, Philippi, 1845) y su relación con la actividad ostrícola en el banco natural del estuario Quempillén de la Comuna de Ancud. 2018. Universidad Austral de Chile. pag. 3-5, 6, 9,  14-15.

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Especies colectadas en diferentes sectores. En chile las mas comunes son Argopecten purpuratus, conocido como ostión del norte y Chlamys zygochlamys comúnmente llamada ostión del sur patagónico.
En otros paises se encuentran especies como Agropecten circularis en baja california  y Euvola vogdesi en Estados unidos

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Etapa inicial:
Una vez producida la fertilización, comienza el proceso de desarrollo larval alrededor de 11 y 24 horas surge una primera etapa larval conocida como trocófora. Esta tiene movimientos natatorios y rotativos en un mismo eje característicos para su identificación. A los 4 días de edad post fecundación es que se puede apreciar la aparición de una larva con una concha característica de forma semicircular, conocida como larva D.
Tiene dos características principales para su reconocimiento como es la prodisonconcha 1 y la formación de sus dientes provinculares.

Esta etapa puede tener un tiempo estimado de 9 a 32 días dependiendo de las condiciones alimenticias y parámetros ambientales.
Ilustración de larva D y dientes provinculares

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Etapa posterior:
comienza con la formación de una protuberancia dorsal o umbo que dan inicio la fase de larva Veliger y Veliger umbonada, la cual tiene un velo con la capacidad de formar microcorrientes para atraer el alimento, principalmente fitoplancton, diatomeas, dinoflagelados.
En esta etapa tiene marcas de líneas de crecimiento que permiten la rápida distinción entre ambas prodisoconchas y también comienza el desarrollo del manto y musculo aductor, por lo que ya tiene la capacidad de encerrar su cuerpo entre sus valvas.
Existe un ultimo estadio larval antes del desarrollo post-larval llamado larva Pediveliger cuando alcanzan una talla entre 170 y 260 um.  La cual, ya tiene adaptaciones para comenzar a asentarse en el sustrato, como el cambio de su densidad, provocado principalmente por un aumento en el consumo de lípidos , así mismo este estadio ya se encuentra estructuralmente funcional con un pie conformado, para así poder localizar un sustrato adecuado y continuar con su metamorfosis y desarrollo post larva. Otro proceso que ocurre simultáneamente es la reducción del velo, acompañado de procesos de secreción glandular.
Un indicador importante a una próxima metamorfosis es la mancha ocular.

imagen representa pie y conchas conformados para un optimo asentamiento

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Una de las características principales que representan a los pectinidos y los diferencian de otros bivalvos, es que no se fijan al sustrato permanentemente sino que tienen la capacidad de reptar sobre el, hasta que encuentra un sitio adecuado. Al ocurrir esto simultáneamente ocurrirá la metamorfosis, para transformarse morfológicamente a una post-larva. Esta da inicio a su vida bentónica, su velum se reabsorbe y la branquia toma su posición. Luego se inicia la secreción de su concha definitiva (disconcha), tomando la forma característica del individuo adulto. Cabe destacar que este proceso ocurre de forma natural y simultanea.

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El modelo long line de cultivo suspendido para la captación de semilla de pectínidos es una estructura flotante de forma trapezoidal compuesta por un cabo de polipropileno o nylon.

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Boats and boating--Equipment and supplies

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¿Por qué es usado el material filamentoso?

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¿Por qué es usado el material filamentoso?

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Se ha comprobado que los pectínidos tienen afinidades específicas por determinados sustratos, dependiendo de las características del material con el que están formados, siendo los materiales sintéticos y filamentosos buenos sustitutos de los materiales de fijación presentes en el medio natural.

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Boats and boating--Equipment and supplies

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Diseño de long-line y redes filamentosas

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Diseño de long-line y redes filamentosas

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Ventajas y desventajas de colectores artificiales

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Ventajas y desventajas de colectores artificiales

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Ventajas:

Optimización de colectores

Mejor y mayor manejo del crecimiento de cultivo y un seguimiento más detallado.

Desventajas:

Presencia de depredadores como limitante.

Muy dependiente del tiempo de despegue y las condiciones del aire

Requiere mantenimiento extensivo de depredadores, fouling, fauna y flora.

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La mortalidad de las larvas y post-larvas se atribuyen principalmente a la infección por bacterias, específicamente las bacterias del género Vibrio. También pueden aparecer bacterias provenientes del alimento (microalgas, emulsiones, etc.)

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Periodo del año:
En experiencias realizadas en el Golfo San José en los años 1978 a 1982 por Daniel Eduardo y Alicia T. de Guerrero, comprobaron que las mejores fechas de captación eran en los meses de diciembre y enero.

En la primera experiencia que se realizo en los años 1970 a 1980 hay un único pico de consideración, que es en el año 1978, en cambio en la segunda experiencia que se realizó en los años 1980 y 1982 el pico de máxima captación fue en enero y diciembre de 1981, debido a la considerable cantidad de mitílidos captados en el mes de diciembre del año 1980 se verifica que la probabilidad del pico de captación de Aulaconmia ater es en los años 1980 y 1981 en los meses de diciembre y enero

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Captación de larvas de mitílidos. En la captación de larvas de mitílidos como Aulaconmya ater, se utilizan colectores de polietileno, suspendidos cerca a la población adulta en la naturaleza, o también en balsas de cultivos, para lograr aumentar la fijación.  De las escolleras que están en las costas, se obtienen el mayor volumen de captación, para abastecer a los parques de cultivo, debido a su alto poder de adhesión a la cuerda y buena calidad.

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La colocación de A. ater, alrededor de la cuerda o encordado, se logra tensando la cuerda desde sus dos extremos, siendo ubicada aproximadamente a 1,30 m del suelo, luego se insertan los PVC cada 25 a 30 cm. Se colocan sobre una bandeja de madera deslizada bajo la cuerda, para facilitar el encordaje de la semilla, a medida que se va vendando en torno a ésta, con la malla de rayón. Cuando se finaliza el concordado, la cuerda es soltada y enrollada, se debe evitar romper la malla de rayón, luego se debe eliminar el agua de las cuerdas, y esto se realiza enrollándola, después tomarla de un extremo de los cuales se amarrarán a la balsa, se arrojan al agua, estas adoptan rápidamente la forma vertical debido a su peso.

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Uno de los factores principales de la alteración de cultivos de mitílidos es la temperatura ya que puede influir en su desarrollo y en el aumento de la mortalidad del individuo, investigaciones indican que el efecto letal en mytilus se puede encontrar dentro de 24 horas entre 30 y 31°C. Se puede observar una mortalidad masiva de organismos en cultivo debido al mal manejo de estos, por excesiva exposición de siembra, desprendimiento de colectores por mala manipulación, factores externos ambientales y adversos y aumento en la fauna incrustante.

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El crecimiento larvario depende de la temperatura, debido a que al aumentar se incrementan procesos metabólicos en el cultivo, cuando el crecimiento es menor existen diferencias en el sistema de cultivo además puede influir la composición, calidad y cantidad de la dieta suministrada. Cuando la temperatura es baja, los organismos retrasan los cambios de sus estadios larvales por lo que el cultivo puede demorar unos días más para finalizar sus estadios larvarios pediveliger. Esto hace que aumente el periodo de natación libre, hace que el cultivo sea mucho mayor y promueve la supervivencia de la población de larvas.

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Dentro de los problemas se encuentran principalmente las enfermedades de las cuales se desconocen estas patologías aparecen atacando al cultivo debido a que aparecen repentinamente y es muy difícil evitarlas. En algunas ocasiones es imposible poder eliminarlas. Otra alteración en el proceso de captación es la aparición de mareas rojas que afectan directamente los cultivos de mitílidos, debido a que se prohíbe su comercialización, este problema es difícil de predecir completamente. Otro factor es la falta de alimentos debido a la sobrecarga de ecosistemas, ya que en esta área se ha encontrados una disminución en el rendimiento del producto. Otro aspecto podría ser la amenazada de la salmonicultura mediante sustentabilidad y crecimiento, esta competencia se debe al espacio y a la columna de agua.

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Para los mitílidos podemos usar 3 métodos de cultivo: Cultivo de fondo, en estacas o en sistemas suspendidos. Dentro de este ultimo los mas empleados son las balsas y el metodo "long-line".

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Consiste en un cabo de nylon.  Este cabo se llama Línea madre, la cual se mantiene suspendida en la columna de agua por una serie de flotadores que generalmente son de Plumavit.

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Boats and boating--Equipment and supplies

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Formadas  por un sistema de flotación (flotadores) y una estructura de madera. Este sistema se una a unas vigas y desde estas vigas, penderán las cuerdas de cultivo. Además es necesario usar un anclaje para el fondeo.

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Los colectores más usados en la mitilicultura consisten en una tira de red de pesca en desuso que presenta una superficie filamentosa apta para la fijación de semillas de choritos. Sus medidas son de 20 - 25 cm de ancho y 8 m aproximadamente de largo. En su parte inferior se le adiciona una piedra para mantener la verticalidad del colector. Son fáciles de manipular. de bajo costo y pueden ser empleados varias veces.

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Los colectores deben ser instalados al momento en que la larva esta biológicamente madura para fijarse, de tal modo que no se fijen a los colectores, larvas de otros organismos no deseados.