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ESTUDIANTE:

ANDRADE PARRAGA SHARICK LILIBETH

BERMELLO RUIZ TANIA MABEL

DELGADO PINCAY ANGY STEPHANIE

LOOR MARRIOTT ANDREINA MICHAEL

QUIROZ BERMEO SHIRLEY DAYANA

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Es un líquido claro e incoloro que baña las superficies externas del encéfalo y la médula espinal, actuando como amortiguador entre el sistema nervioso central y los huesos circundantes. Se encuentra mayoritariamente en los ventrículos del encéfalo y en el espacio subaracnoideo, que rodea el encéfalo y la medula espinal.

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Se compone principalmente de agua, sodio, potasio, calcio, cloro y sales inorgánicas (fosfatos) y componentes (gliales)
En condiciones normales contiene de 50 a 80 mgs/dl de glucosa y de 120 a 130 mEq de cloruro por litro.

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El LCR es producido en un 70% en los plexos coroideos de los cuatro ventrículos cerebrales, sobre todo los laterales y 30% en el epéndimo. Un adulto tiene 150 ml de éste y se renueva cada 3 ó 4 horas. La eliminación del líquido cefalorraquídeo se lleva a cabo a través de las vellosidades aracnoideas, proyección de las células de la aracnoides sobre los senos vasculares que alberga la duramadre. Estos senos desembocará directamente en el torrente sanguíneo. En la región más anterior del cerebro está el espacio subaracnoideo de los lóbulos olfatorios, que se continúa con un espacio alrededor de los nervios olfatorios (por lo tanto, queda muy cerca de la mucosa olfatoria y del espacio aéreo de la nariz). Desde esta región pasa a los ganglios linfáticos.

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En los seres humanos, el LCR se forma a una tasa de 0,35 – 0,5 ml/min (cerca de 500ml/día), secreción activa y ultrafiltración a partir del plasma.
Se calcula que la tasa de recambio de LCR es de 4 ó 5 veces por día.
El LCR entre formación y reabsorción hace que el volumen total:

Adultos: 100 a 150 ml

Lactantes y niños: 70 a 90 ml

Neonatos: 10 a 60 ml.

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Actúan como amortiguador y protege de traumatismos al sistema nervioso.

Proporciona al encéfalo el soporte hidroneumático necesario contra la excesiva presión local.

Sirve como reservorio y ayuda en la regulación del contenido del cráneo.

Transporta los nutrientes al cerebro y elimina los desechos.

Sirve como vía para que las secreciones pineales lleguen a la glándula hipófisis.

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MENINGITIS TUBERCULOSA
Es una complicación de la tuberculosis en la niñez Alta morbilidad, discapacidad y muerte. Incremento por inmunosupresión.

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Comienza en los ventrículos laterales, continúa hacia el tercer ventrículo por el agujeros de Monro y luego transcurre por el acueducto cerebral hasta el cuarto ventrículo. Desde allí fluye, a través de un conjunto de orificios, uno central agujero de Magendie y dos laterales agujeros de Luschka,  que ingresan en la cisterna magna, un gran depósito de líquido ubicado por detrás del bulbo raquídeo y por debajo del cerebelo. La cisterna magna se continúa con el espacio subaracnoideo que rodea todo el encéfalo y la médula espinal. Por último, se vacía en la sangre venosa a través de las superficies de las vellosidades.

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El procedimiento, que ha de realizar un médico, implica un daño potencial para el paciente.

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Para el diagnostico de enfermedades o trastornos que afectan el sistema nervioso central (SNC) tales como sangrado cerebral o intracraneal, cancér, trastornos autoinmunes o infecciones.

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RIESGOS SANGRADO EN EL CONDUCTO RAQUÍDEO (ESPINAL)

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RIESGOS SANGRADO EN EL CONDUCTO RAQUÍDEO (ESPINAL)

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· Lesión de la médula espinal

· Reacción de hipersensibilidad (reacción alérgica) al anestésico.

· Dolor de cabeza después de la técnica que suele desaparecer con el reposo y la toma abundante de líquidos.

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Mantener esta posición durante la realización de la técnica puede resultar incómodo, pero es extremadamente importante no moverse para evitar que la aguja pueda lesionar la médula espinal.

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Características del LCR
Aspecto claro, Recuento leucocitario cel/mm3predominio linfocítico Proteínas 0,5 –2,0 g/lGlucosa > 0,60 g/l o normal Lactato normal PCR < 20 mg/l.

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Debe ser transportada inmediatamente al laboratorio para su procesamiento en un frasco estéril de vidrio tapa rosca. Debidamente identificado.
Se puede mantener en refrigeración a 4°C no mas de 4 a 6 h.
Las muestras para estudios de virus se las envían refrigeradas.

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LCR aspecto claro

•20 a 500 cel/mm3, predominio linfocitos y monocitos
•Proteínas 0,50 –2,00 g/l

•Glucosa < 0,50 o normal

•Lactato aumento leve

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MENINGITIS VIRAL:Los agentes virales de meningitis aséptica son las siguientes: •Enterovirus (el virus de la poliomielitis, Echovirus, Coxsackievirus) •Herpesvirus (Hsv-1, 2, Varicella.Z, VEB) •Paramixovirus (Paperas, Sarampión) •Togavirus (Rubéola) •Rhabdovirus (Rabia) •Retrovirus (VIH).

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PRUEBAS SEROLÓGICAS

No dependen de bacterias viables para resultados positivos- Son especialmente útiles cuando el GRAM es negativo- Test simples con gran disponibilidad en los laboratorios.- Látex o pruebas de aglutinación: Ej. Cripto-Latex en LCR, VDRL en LCR para Neurosífilis, Látex para Brucella, etc.

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Meningitis parasitaria

Forma muy infrecuente

•Inmunodeprimidos

•Causada por amebas de vida libre (Acanthamoeba, Naegleria)

•Toxocara, toxoplasma .

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CULTIVOS EN MEDIOS ADECUADOS
Permite un uso adecuado de antibióticos y de determinar su patrón de sensibilidad. (AGS, AG Chocolate y Schaedler).

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Aspecto del LCR
•Recuento de leucocitos aumentado
•Predominio linfocitos y monocitos
•Proteínas aumento leve a moderado
•Leve descenso de glucosa
•Aumento de lactato
•Formación de película luego de refrigerado

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MENINGITIS FÚNGICAS

Es raro en personas sanas, riesgo mayor en HIV o inmunosupresión. Los agentes más comunes son: Cryptococcus neoformans candida Histoplasma capsulatum.

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PLEOCITOSIS POR CÉLULAS TUMORALES Tumor primario o metástasis Diseminación meníngea de Leucemia o linfomas.

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Aspecto turbio: Como hay disrupción de la BHE, hay Pasaje de fibrinógeno y factores de la Coag. Puede coagular, pero generalmente No es sanguíneo lento PCR > 200 mg/l.

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PLEOCITOSIS POR EOSINÓFILOS Se observa rara vez con recuentos discretos en procesos inflamatorios sistémicos o asociados a infecciones parasitarias, fúngicas o alergias.

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PLEOCITOSIS POR NEUTRÓFILOS
Sugiere diagnóstico de meningitis bacteriana. Comienzo de las meningitis víricas Hemorragia cerebral Fármacos intratecales.

PLEOCITOSIS POR LINFOCITOS
Se asocia a meningitis Vírica Micobacterias Tb o micótica Neurosífilis Meningitis por Listeria Esclerosis múltiple.

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PLEOCITOSIS es el término con que se denomina al aumento de los elementos celulares en el LCR.

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OTRAS TINCIONES - Ziehl-Neelsen o Auramina para
Mycobacterium Tb - Tinta China para criptococo.

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TINCIÓN DE GRAM: Indicación más frecuente para estudio de LCR: MENINGITIS Microorganismos comúnmente encontrados en Meningitis:-Streptococcus pneumoniae50 -Neisseria meningitidis-casi 25% -Estreptococos del grupo B-15% -Listeria monocytogenes-casi 10%  -Haemophilus influenzae -menos de 10%.

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RECUENTO CELULAR Y DIFERENCIAL
Normal: menor o igual a 5 células/ml Predominio linfocitario (linfocitos: %; polimorfonucleares: 1-3 %; monocitos: 0,5-1 %). Se realiza en cámara de Neubauer 40 % de los leucocitos se lisan después de 2 Hs a T amb. Procesar inmediatamente o refrigerar.

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Cómo es la circulación del líquido cefalorraquídeo

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Células: Escasas, de tipo monocítico. Lisis de 40% en
2 horas a temperatura ambiente. Neonatos: Hasta células. Niños y adultos: Hasta 5-10 células.

Punción traumática: Corregir en número de células restando un leucocito por cada 700 hematíes. La cifra total de hematíes tiene escaso valor. Su principal aplicación es corregir el recuento leucocitario o la concentración de proteínas (1mg por cada 1000 hematíes) Se utiliza tinción de GRAM.

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Procedimiento de drenaje ventricular  SILMAG

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Procedimiento de drenaje ventricular  SILMAG

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Procedimiento de punción lumbar paso a paso 

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Procedimiento de punción lumbar paso a paso 

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PRUEBAS PARA ENFERMEDADES INFECCIOSAS EN LCR

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PRUEBAS PARA ENFERMEDADES INFECCIOSAS EN LCR

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Pueden realizarse diversas pruebas para detectar e identificar microorganismos si se sospecha una infección, entre ellas  una tinción de Gram y un cultivo de LCR

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En pacientes hospitalizados en Unidades de Cuidados Intensivos y que tienen colocada una sonda para drenaje de los ventrículos cerebrales se puede usar ésta para la obtención de la muestra

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Se realiza sólo de forma excepcional y en personas con posible hernia cerebral.

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En este caso la aguja se introduce debajo del hueso occipital (parte posterior del cráneo).

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A veces se utilizan rayos X especiales para guiar la introducción de la aguja hasta el lugar apropiado.

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GLUCOSA
Procede de la glucosa sanguínea por mecanismos de transporte activo y difusión por gradiente de concentración.

Glucorraquia: 60-70 % de la concentración plasmática.

Neonatos: Cociente: LCR/Sangre 0.4 y 2.5.

Cambios en los niveles de glucosa -> manifiestan 30 a 90 min más tarde en el LCR.

Hiperglucorraquia : hiperglucemia

Hipoglucorraquia :

MB (↓ ↓ ↓),
HSA,
TBC (↓),
Tumor,
Hipoglucemia -> mala                                perfusión intracr.

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DHL

VN: 8 – 50 U/l.

Tejido cerebral -> LDH 1 y 2.

Linfocitos -> LDH 2 y 3.

Neutrófilo -> LDH 4 y 5.

Aumenta en Meningitis es por destrucción de neutrófilo, linfocitos y células cerebrales.

Aumenta en Infarto, Tumores.

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LACTATO

Es independiente de la concentración plasmática.

VN: hasta 2,8 mmol/l (22 mg/dl).

La destrucción de tejido dentro del SNC x deprivación de O2 -> metabolismo anaerobio -> aumenta la producción de AcL.

LCR xant -> valores elevados falsos -> GR contienen elevada concentración de lactato.

Disminución rápida con terapéutica eficaz.

Aumenta en:

o MB
o M. TB y micótica
o HSA
o Tumores
o Infarto cerebral, edema,  trauma

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LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO

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PROTEÍNAS

Fracciones similares a las encontradas en suero.

VN: 0.15 a 0.45 g/l (AUMENTA > en lactantes y ancianos).

80 % de origen plasmático.

20 % de síntesis intratecal.

Se miden para:

Evaluar el grado de afectación de la BHE consecutivo a inflamación.

Detección de procesos que impliquen una RI en el SNC.

En procesos degenerativo-destructivos del SNC.

Su concentración puede estar alterada por:

Alteración de la BHE.

Obstrucción de la libre circulación del LCR.

Aumento de la síntesis o liberación de PR in situ.

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Celulas: Escasas, de tipo monocitico. lisis de 40% en:

2 horas a temperatura ambiente

Neonatos: hasta 20-30 células .

Niños y adultos hasta 5-10 células.

Punción traumatica: corregir en número de celulas restando un leucocito por cada 700 hematies.

Se utiliza Tinción de Gram.