# data[].attributes.headline
  Regulación del Crecimiento y Desarrollo

# data[].attributes.subject
  Regulación del Crecimiento y Desarrollo

# data[].attributes.body
Regulación de la Senescencia y diferenciación de tejidos: participa en la regulación de la senescencia de las hojas y otros tejidos vegetales. El ácido abscísico (ABA) regula la senescencia foliar al inducir la expresión de genes implicados en la degradación de clorofila y la síntesis de proteínas de almacenamiento (Vishwakarma et al., 2017). También está involucrado en la diferenciación de tejidos vegetales, como la formación de tejido vascular (Cutler et al. 2010).

# data[].attributes.body
Regulación del Crecimiento de Raíces: En cuanto al crecimiento de las raíces, inhibe del crecimiento primario de las raíces bajo condiciones de estrés hídrico. El ABA regula el crecimiento de las raíces principalmente a través de la modulación de la elongación celular y la proliferación de células meristemáticas (De Smet et al., 2003).

# data[].attributes.body
El ácido abscísico fue aislado y caracterizado por primera vez a mediados de la década de 1960. Concretamente, se reconoció como una sustancia que intervenía en la caída de las hojas y la dormancia de las yemas. En 1965, Fredrick Addicott y su equipo en la Universidad de California, Riverside, aislaron esta hormona vegetal y le dieron el nombre de "abscisina II", debido a su papel en la abscisión (caída de las hojas). Más tarde, se le denominó "ácido abscísico" (ABA).

# data[].attributes.body
Descubrir el ácido abscísico (ABA) fue de gran importancia por varias razones, que abarcan tanto la comprensión fundamental de la fisiología vegetal como aplicaciones prácticas en la agricultura y la biotecnología.

# data[].attributes.body
Es una hormona vegetal responsable de la latencia y la inhibición del crecimiento. Cuando se descubrió y probó por primera vez, se pensaba que el ácido abscísico desempeñaba un papel en la abscisión o el desprendimiento de las hojas o frutos de la planta. Esto es parte de cómo la hormona obtuvo su nombre, aunque la mayoría de los científicos ya no creen que el ácido tenga esa función.

La primera vez que se identificó y describió el ácido abscísico fue en 1963. El científico Frederick Addicott, en compañía de sus asociados, buscaba la hormona que causaba la abscisión de frutos en plantas de algodón. Se aislaron dos compuestos diferentes, y en ese momento se denominaron abscisina I y abscisina II. Este último finalmente llegó a ser conocido como ácido abscísico, aunque su papel en la abscisión ahora se considera dudoso en el mejor de los casos (Spiegato, 2021).

# data[].attributes.headline
¿Por qué descubrieron el Acido Abscísico?

# data[].attributes.subject
¿Por qué descubrieron el Acido Abscísico?

# data[].attributes.body
El descubrimiento del ácido abscísico (ABA) fue impulsado por investigaciones enfocadas en entender ciertos procesos fisiológicos específicos en las plantas, en particular, la abscisión de hojas y la dormancia de semillas y brotes.

# data[].attributes.body
Esta hormona se encuentra en todas las plantas. También puede ser encontrada en algunas especies muy puntuales de hongos, en bacterias y en algunos metazoos desde los cnidarios hasta los humanos. Se puede decir que existe en la mayoría de monocotiledóneas, dicotiledóneas, gimnospermas y hasta en helechos (Gelambi, 2022).

# data[].attributes.body
Las semillas de cuatro especies de heliconias presentaron contenidos diferentes de ácido abscísico endógeno . La mayor concentración se observó en semillas de la especie H. collinsiana, seguidas de H. psittacorum y H. latispatha. Los menores niveles de esta fitohormona los presentaron las semillas de H. bourgaeana (Benítez-Domínguez et al., s. f.).

# data[].attributes.body
Otras especies en donde se encuentra el acido abscísico son: Axinella polypoides, Eudendrium recemosum y toxoplasma gondii (Benítez-Domínguez et al., s. f.).

# data[].attributes.body
Regulación del Cierre de Estomas: Durante condiciones de sequía, el ABA se acumula en las hojas y juega un papel central en el cierre de los estomas. Esto ayuda a reducir la pérdida de agua por transpiración, conservando así el agua dentro de la planta (Cutler et al., 2010).

# data[].attributes.body
Regulación de Respuestas Metabólicas y Fisiológicas: No solo controla el movimiento de agua a través de la regulación de estomas, sino que también induce respuestas metabólicas y fisiológicas que permiten a las plantas adaptarse mejor a condiciones estresantes. Esto incluye la síntesis de proteínas de choque térmico, antioxidantes y otros metabolitos protectores (Nakashima et al., 2009).

# data[].attributes.body
Regulación de Respuestas Genéticas: Regula la expresión de numerosos genes involucrados en la respuesta al estrés, como aquellos relacionados con la biosíntesis de proteínas de defensa y la síntesis de antioxidantes (Vishwakarma et al., 2017).

# data[].attributes.body
Interacción con Auxinas: El ABA y las auxinas interactúan para regular procesos de crecimiento y desarrollo en las plantas. Por ejemplo, se sabe que el ABA puede antagonizar los efectos de las auxinas en la elongación celular y la división celular (Davies, 2010).

# data[].attributes.body
Interacción con Giberelinas: El ABA y las giberelinas tienen funciones contrapuestas en la regulación del crecimiento y la germinación de las semillas. El ABA generalmente inhibe la germinación de las semillas, mientras que las giberelinas la promueven (Cutler et al., 2010).

# data[].attributes.body
Interacción con Etileno: El ABA y el etileno interactúan para regular la respuesta de las plantas al estrés abiótico y la maduración de los frutos. Ambas hormonas pueden actuar sinérgicamente o de manera opuesta dependiendo del contexto fisiológico de la planta (Wilkinson et al., 1997).

# data[].attributes.headline
Regulación de la Germinación de Semillas

# data[].attributes.subject
Regulación de la Germinación de Semillas

# data[].attributes.body
Inducción de la Dormancia: Induce y mantiene la dormancia de las semillas, lo que impide que germinen prematuramente en condiciones subóptimas. Durante la maduración de las semillas, se acumula ABA en los tejidos de la semilla, inhibiendo así la germinación hasta que se reduzcan los niveles de ABA o se presenten condiciones ambientales adecuadas.

# data[].attributes.body
Inhibición de la Germinación: Actúa directamente inhibiendo la elongación del embrión y reprimiendo la actividad de enzimas que promueven la germinación (Seo et al., 2009).

# data[].attributes.body
Ha sido implicado en la modulación de respuestas de defensa de las plantas contra patógenos, tanto bióticos como abióticos. Aunque menos estudiado en comparación con otras hormonas vegetales, el ABA parece jugar un papel importante en la regulación de la inmunidad de las plantas (Adie et al., 2007).

# data[].attributes.headline
Hormonas y Reguladores del Crecimiento: Ácido Abscísico

# data[].attributes.subject
Hormonas y Reguladores del Crecimiento: Ácido Abscísico

# data[].attributes.attachment_caption
Síntesis, degradación y transporte de ABA

# data[].attributes.body
La fitohormona ácido abscísico (ABA) fue identificada en los 1960s tras estudios realizados sobre la abscisión de frutos y la dormancia de yemas. El grupo liderado por F. Addicott aisló compuestos que provocaban la abscisión de frutos de algodón y en 1963 identificó una de ellas, abscisina II, como ABA. Poco después otro grupo de investigación liderado por P. Wareing aisló una sustancia de hojas de Acer pseudoplatanus que promovía latencia de yemas. Esta, llamada dormina, también fue identificada como ABA. Desde entonces, ABA ha sido implicada en múltiples procesos fisiológicos como regulación de crecimiento, dormancia de semillas, germinación, senescencia, división celular, control de la apertura de estomas y respuestas a estreses ambientales como sequía, salinidad, baja temperatura, ataque por patógenos y radiación ultravioleta (Addicott & Carns 1983, Leung & Giraudat 1998, Assmann & Shimazaki 1999).

ABA es un compuesto que existe naturalmente en plantas inferiores (algas, musgos e incluso algunos hongos) y superiores. Es un sesquiterpenoide (15 carbonos) y sus rutas biosintética y catabólica han sido esclarecidas principalmente por la caracterización bioquímica de mutantes aba de Arabidopsis y viviparous (vp) de maíz. Las mutantes vp de maíz, por ejemplo, tienen un fenotipo albino (no acumulan antocianinas en la aleurona del grano), niveles bajos de ABA, las semillas no son dormantes y son plantas sensibles a falta de agua y con apariencia marchita (Milborrow 2001, Nambara & Marion-Poll 2005).

# data[].attributes.headline
Sensibilidad al ABA del mutante deficiente en el receptor de etileno CpETR2b de Cucurbita pepo

# data[].attributes.subject
Sensibilidad al ABA del mutante deficiente en el receptor de etileno CpETR2b de Cucurbita pepo

# data[].attributes.body
Se realizó una investigación en la Cucurbita pepo L. subsp. pepo. En concreto, para su estudio se ha utilizado el mutante etr2b, insensible a etileno, identificado por el grupo de investigación BIO293. Los resultados  han revelado que las hormonas ABA y etileno interactúan especialmente durante la germinación de las semillas. Además, estas hormonas también interactúan en el desarrollo radicular. La aplicación externa de ABA provoca estrés en las plantas y su vigor se muestra disminuido frente a los tratamientos control, aunque el efecto sobre las plantas mutantes etr2b ha sido menor que sobre las plantas WT (Bakshi et al., 2017).

# data[].attributes.headline
Efecto del ácido abscísico sobre fenotipo y calidad del fruto en vid Shiraz

# data[].attributes.subject
Efecto del ácido abscísico sobre fenotipo y calidad del fruto en vid Shiraz

# data[].attributes.body
El objetivo fue determinar el efecto del ácido abscísico (AAB) en el rendimiento y calidad de frutos de vid cultivar Shiraz. Se evaluó en campo la longitud y peso de racimos; y el rendimiento por planta. En laboratorio se determinó en los frutos maduros el pH, acidez y solidos solubles; además del contenido de polifenoles totales, procianidinas y antocianinas totales considerando que estas sustancias influyen en la coloración de los hollejos en las bayas. El experimento se realizó en Parras de la Fuente, Coahuila. El AAB se asperjó durante el envero a 0 (agua-testigo), 200, 400, 600 y 800 mg L⁻¹. Se observó que el AAB a cualquier dosis no modificó parámetros fenotípicos; tampoco, solidos solubles, acidez y pH. El AAB provocó incrementos significativos en polifenoles (23%), procianidinas (25%) y antocianinas totales (20%) en frutos con las dosis de 800, 600 y 200 mg L⁻¹, respectivamente( Ramirez et al., 2019)