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Ejercen su acción en las partes vivas de la célula sin alterar su metabolismo. Esta técnica, al no tener fijación, permite ver el movimiento de los microorganismo. Además, mejora el contraste al estar teñidas las células, facilitando su visión, pero esta lo suficientemente diluido el colorante como para que tiña, pero sin llegar a matar los microorganismo.

# data[].attributes.body
Permite observar microorganismos sin movimientos.

La tinción mejora considerablemente el contraste.

Se realiza un frotis por distribución de la muestra con agua.

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Un microorganismo gram positivo debe presentar una pared celular sana, si sufre daño de la pared se vuelve gram negativo.

La cepa a observar debe ser de 24 horas.

Tomar cantidad adecuada de muestra.

Manipulación cuidadosa al esparcir.

Elegir colorantes adecuados al componente celular a teñir.

Verificación control calidad colorantes (teñir cepas típicas juntas Gram (+) Gram (-)

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•COLORANTE: Sustancia capaz de dar color a células, tejidos, fibras, etc.

Químicamente constituido por:

1. Cromóforo: Grupo aislado, covalente e insaturado que tiene una absorción característica.

2. Auxócromo: Son grupos funcionales o radicales que constituyen una molécula y poseen carga parcial positiva, tienen la función de intensificar el color.

•AGENTE MORDENTE: Aumenta la afinidad entre el colorante/intensifican  en color.

•AGENTE DECOLORANTE: Disolvente que se utiliza para eliminar el colorante no fijado.

# data[].attributes.body
Se denomina frotis a la extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra o cultivo con objeto de separar lo más posible los microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida.

# data[].attributes.body
Hay un ligero encogimiento de la célula.

Requiere de una muy delgada capa para observarse mejor.

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Materiales Frotis fijo y Tinción simple para Bacterias

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Materiales Frotis fijo y Tinción simple para Bacterias

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Portaobjetos

Alcohol 70%

Franela

Mechero

Agua destilada

Asa

Cultivo de bacterias (Bacilos aislados, Cocos en tétradas y sarcinas, Estreptobacilo)

Colorantes que se pueden usar (Cristal violeta, Safranina, Fuscina, Verde malaquita, Azul de metileno)

# data[].attributes.headline
Frotis fijo y Tinción simple para Bacterias

# data[].attributes.subject
Frotis fijo y Tinción simple para Bacterias

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Permite aplicar métodos de tinción.

Hace que las bacterias queden inactivas y adheridas al portaobjetos.

Desnaturaliza las enzimas bacterianas presenvando las estructuras.

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Frotis fijo y tinción simple para bacterias (identificación)

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Morfología bacteriana microscópica

Cocos

Bacilos

Espirilos y espiroquetas

Morfología bacteriana macroscópica

Medio del cultivo sólido

Medio de cultivo líquido

Medio de cultivo semisólido

Bibliografía sobre morfología bacteriana

Morfología bacteriana

Existen diversas formas de identificar los microorganismos, una de las más utilizadas por su facilidad y bajo costos es la identificación por características morfológicas, esta se basa en identificar las características observables de las bacterias tanto al microscopio como en cultivo. En consecuencia, el estudio sobre la morfología bacteriana puede ser desde el punto de vista de un microscopio o en función del medio de cultivo (macroscópico).

Como su nombre indica la morfología bacteriana microscópica hace referencia al tamaño de las bacterias, está en el rango de los 0,5 hasta los 10 micrómetros, por esta razón es necesario utilizar el microscopio para observarlas. Su forma se relaciona con la rigidez de su pared celular, las bacterias se diferencian según su forma en:

Cocos

Son bacterias con forma esférica, su tamaño va de 0,6 a 1 micrómetro. Los subtipos de cocos se relacionan con el modo en que se dividen y la forma en que se agrupan, así los que permanecen separados y unitarios se denominan cocos, si permanecen en pares diplococos, los que forman cadenas estreptococos y los que forman racimos estafilococos. El modo en que se agrupan suele ser usada como característica morfológica para su clasificación e identificación.

Bacilos

Son bacterias alargadas y rectas en forma de bastón, difieren entre especies por su anchura, longitud y la forma de sus extremos. En los bacilos el modo en que se agrupan no suele tener relevancia para su clasificación e identificación.

Espirilos y espiroquetas

Son bacterias en forma de espiral, se agrupan en los de espira rígida llamados espirilos y los de espira flexible denominados espiroquetas. Para efectos de su clasificación se tienen en cuenta la longitud de la vuelta, la presencia o ausencia de envoltura externa, el ángulo formado por los extremos de la célula y la composición del filamento axial.

Morfología bacteriana macroscópica

En su mayoría las bacterias se multiplican rápida y eficazmente formando colonias que son visibles sin aparatos especiales cuando se siembran en medios sólidos, de ahí que se hable de morfología bacteriana macroscópica, para su identificación se prefiere sembrarlas en medios no selectivos y que las colonias sean de cultivos frescos. En este caso se puede observar el tamaño, morfología bacteriana y agrupación de las colonias, estas características son utilizadas para su identificación.

En consecuencia, se estudia la morfología bacteriana atendiendo a otros criterios y teniendo en cuenta determinadas características, las cuales están directamente relacionadas con el medio de cultivo donde crecen las bacterias, pero son muy constantes entre las especies.

Medio del cultivo sólido

Las características observadas en medio de cultivo sólido se explican a continuación:

Tamaño: El tamaño de la colonia suele ser uniforme en una misma especie o tipo, existen colonias de diámetro de menos de un milímetro que se denominan pequeñas o puntiformes, medianas de hasta 4 mm y se llaman grandes a las colonias de diámetros miden más de 4 mm de diámetro.

Forma: Está determinada por la forma de su borde y su espesor. La forma de las colonias puede ser circular, irregular y filamentosa. Los bordes pueden ser enteros o lisos, ondulados, lobulados o filamentosos

Consistencia y textura: La consistencia es de dos tipos las colonias que son duras y secas que al ser tocadas por el asa bacteriológica se mueven sobre la superficie del agar, suelen ser difícil manipular y a menudo se fragmentan al intentar cogerlas. La otra consistencia es la cremosa o viscosa que se pega al asa al tocarla, estas van desde una consistencia mantecosa hasta extremadamente viscosas, estas últimas al manipularlas forman hilos.

Superficie: Puede ser plana o en forma de disco, convexa o semiesférica, acuminada, cerebroide, con bordes elevados en forma de cráter o con centro elevado.

Comportamiento con respecto a la luz: En este se observan dos características, la luz reflejada que hace que la colonia sea brillante u opaca; y la luz transmitida que se divide en opaca, es decir, que no transmite luz, translúcida que permite el paso de luz pero no completamente y transparente que deja pasar la luz permitiendo ver a través de la colonia.

Color: Esta característica está presente en colonias, se describe la aparición del pigmento, su color y este se difunde o no en el agar.

Olor: Determinadas especies de bacterias producen olores característicos al descomponer ciertos sustratos.

Medio de cultivo líquido

En medio de cultivo líquido, las bacterias presentan otras características que también son útiles para su identificación, las más importantes se describen a continuación:

Turbidez: Se refiere a que el medio de cultivo se observa más o menos denso, esta característica se relaciona con el crecimiento de la bacteria en el medio.

Película: Se observa si la bacteria crece formando una película en la superficie del medio líquido.

Sedimento: Se aprecia la formación de sedimentos en el fondo del tubo que se suspenden al agitar.

Medio de cultivo semisólido

Para concluir el tema sobre morfología bacteriana, destacar que el medio de cultivo semisólido se puede estudiar si la bacteria es móvil o inmóvil observando si se traslada a partir del lugar de siembra.

Bibliografía sobre morfología bacteriana

– Brock, M. (2007).

– Fernandez, A., Garcia, C., Saéz, J., Valdezate, S. (2010)

– Piréz, M., Mota., M. (2010)

# data[].attributes.attachment_link.description
Morfología bacteriana y su identificación microscópica, y macroscópica a través de medios de cultivos. Estructura, características y tipos.

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5.0 de 5 estrellas Free Extras!
Calificado en Estados Unidos el 8 de agosto de 2019

Awesome! I just purchased the stain and I'm really pleased with the product. It came with a couple inexpensive but priceless goodies, including gloves, a towel some disposable pipettes, and a preparation guide. Good deal!

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Calificado en Estados Unidos el 3 de enero de 2019

I bought this stain kit to accompany a new microscope for my son, who is in 7th grade. From the Amazon descriptions and company website, these products appeared appropriate for kids his age and younger, to be used with basic microscopes. However, some of the experiments described in the product guide seem to require advanced equipment and much more powerful microscopes than the one we had purchased -- and the stains come with multiple safety warnings to use gloves and goggles. That's much more than I want to get into in my home kitchen. Worse still, I opened the package only to find that three of the stains had leaked in their bag, creating who knows what kind of toxic mixture. I am sending them back to be disposed of safely and properly. The kit did provide gloves and a disposable protective cover for your workspace, but the product description needs to give parents a very direct heads-up that these stains are not for your average kitchen science.

Calificado en Estados Unidos el 7 de enero de 2019

I bought this as a gift alongside a microscope and this was exactly what I was looking for.
The stains were well packaged in bubble wrap and paper but one of the bottles was still broken on arrival. Such is life. I messaged the seller and Rachel immediately responded and sent over a replacement which was very nice of her considering this was over the holidays.

The kit also came with a sizeable leaflet that I found extremely helpful. It contains step by step lessons on how to use the stains properly and safely. My daughter and I managed to get onion and cheek cells mounted without too much trouble despite never having done it before. Many thanks!

Calificado en Estados Unidos el 22 de julio de 2017

This product came on time, was packaged so there was no damage and had a nice note from the company. I love all these stains. They are safe, effective and come with terrific instructions.

Calificado en Estados Unidos el 8 de agosto de 2019

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Calificado en Estados Unidos el 8 de agosto de 2019

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Imágenes en esta reseña

Calificado en Estados Unidos el 16 de octubre de 2021

Calificado en Estados Unidos el 11 de noviembre de 2017

These stains were exactly what I needed for staining cells. Excellent quality.

Calificado en Estados Unidos el 3 de noviembre de 2019

Great product, great packaging!

Calificado en Estados Unidos el 7 de marzo de 2018

Good for blood, different objects and liquids.

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Kit de 5 tinciones vitales biológicas - 30 ml (1 onza), soluciones azul de metileno, eosina Y, café Bismarck Y, Janus Verde B, y rojo neutral, botellas con cuentagotas de vidrio, color ámbar

# data[].attributes.attachment_link.description
vidrio de alta calidad, gran valor - en fácil de usar ámbar cuentagotas Botellas Este kit incluye 5 de las más comunes y las manchas seguro para laboratorio en general. Funcionan perfectamente con su microscopio biológico. Un manual de usuario con la información de las manchas, ejemplos de tinció...

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Procedimiento Paramecium sp. Tinción vital con rojo neutro

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Procedimiento Paramecium sp. Tinción vital con rojo neutro

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1. Colocar  con ayuda de una pipeta Pasteur 1 gota de muestra sobre un portaobjetos(limpio y desengrasado), adicionar 1 gota de colorante.

2. Colocar el borde de un cubreobjetos sobre la gota en un ángulo de 45°.

3. Dejar caer el cubreobjetos gentilmente sobre la gota de muestra.

4. Observar al microscopio a 10x y 45x

5. No iluminar en exceso, baja intensidad de luz.

6. Describir morfología y organelos observados.

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Andrea Monserrath Pavón Girón 20201004347

Silvia Yasmín Valladares Pineda 20201004983

Lilian Marcela Ponce Palma 20201005227

Sindy Abigail Alemán Acosta 20202001744

Raquel Abigail Garcia Alvarado 20211001256

Yoel Fabricio Sosa González 20211001705

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Sánchez, L. A. (2017). Estudio microscópico de microorganismos. Core.ac.uk. https://core.ac.uk/download/pdf/154797545.pdf

Perez, D. R. (2020). Preparaciones fijas y en fresco. Unam.mx. https://amyd.quimica.unam.mx/mod/resource/view.php?id=8597&forceview=1