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SEM uso de meio conservante: processar, no máximo, até 1h após a coleta (apesar do limite máximo ser de 3h); não refrigerar (pois a baixa temperatura pode mascarar o resultado. Por exemplo: Shigella sp por ser inibida a temperaturas de 4º a 8ºC).

COM uso de meio conservante (para evitar a acidificação da amostra): podem ser conservadas em até 24h. Meios mais utilizados: Meio de Cary-Blair; Solução de Glicerina Tamponada (vermelho de fenol – pH 7,2: neutro); MIF (Mertiolato Iodeto Formalina – usado para conservação formas de helmintos, principalmente).

Fezes DIARREICAS: 1 parte de fezes + 8 partes de meio Fezes FORMADAS: 1-2g (equivalente a 1 colher de sobremesa) + 10 mL de meio

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Fermentação de carboidratos: glicose, lactose, manitol e sacarose. Utilizando ágar TSI (Triple sugar iron), principalmente.

Prova do citrato: verifica a utilização do citrato como única fonte de carbono. Utiliza o meio Citrato de Simmons.

Prova do indol: verifica a produção de triptofanase. Utiliza ágar semi-sólido SIM ou Caldo com triptofano.

Outros meios verificam a motilidade, produção de gás sulfeto de hidrogênio (H2S) e a enzima urease.

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Processamento da amostra no laboratório:

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Processamento da amostra no laboratório:

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Microscopia: para evidenciação de polimorfonucleares (PMN) – e o possível agente invasor. A coloração com Eosina é boa para visualização de Campylobacter spp e a coloração pelo método de Gram é boa para superinfecções por Staphylococcus spp.

Cultura - seguirá o seguinte caminho: Fezes ---> Meios de Enriquecimento ---> Meios seletivos indicadores ---> Identificação (Provas Bioquímicas).

Meios de Enriquecimento: favorecem o crescimento bactérias fastidiosas.

Caldo Selenito: mais usado em laboratório de rotina, com incubação máxima de 12h para posterior semeadura em meio seletivo indicador.

Caldo Tetrationato: mais usado para análise bacteriológica de alimentos. Meios Seletivos Indicadores: podem inibir o crescimento de outros grupos dependendo da seletividade do meio. Não serão utilizados caso não haja uma suspeita específica. Meios de Baixa Seletividade: só irão crescer bastonetes gram negativos que não são exigentes nutricionais, indicando a fermentação da lactose. Exemplos: Ágar EMB (gram negativo); Ágar Mac Conkeym (gram positivo).

Meios de Média Seletividade: evitam o crescimento de bastonetes. Exemplos: Ágar SS; Ágar Hektoen (agente impediente: sais biliares. Possui maior eficácia que o Ágar SS, pois o SS indica a produção de H2S).

Meio de Alta Seletividade: selecionam principalmente gram negativos. Exemplos: Ágar Sulfito Bismuto; Ágar Verde brilhante.

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Processamento da amostra no laboratório:

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Fezes coletadas a mais de 3h e sem conservantes;

Mistura de várias amostras coletadas no mesmo dia;

Fezes líquidas coletadas e / ou enviadas em fraldas (crianças e idosos, por exemplo – devido à possível contaminação);

Amostras de fezes contaminadas com urina.

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Preferencialmente, no início da doença. E dependendo da suspeita clínica, mais de 1 vez em dias diferentes. E antes do uso de antimicrobianos (antibióticos), pois o isolamento será dificultado após a administração desses medicamentos.

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Na coleta de um material estéril, todo o cuidado é pouco. Veja, a seguir, os procedimentos adequados para que a amostra não seja contaminada.

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Quais infecções bacterianas intestinais? 

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Quais infecções bacterianas intestinais? 

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As infecções bacterianas intestinais são causadas por bactérias invasivas (Salmonella sp, Shigella sp, Escherichia coli enteropatogênica, Yersinia enterocolitica), toxigênicas (Vibrio cholerae, Campylobcater sp, Escherichia coli enterotoxigênica) e outras.

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São elas: Salmonella sp, Shigella sp, Escherichia coli enteropatogênicas, Yersinia enterocolitica, Vibrio cholerae e Campylobacter sp.

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A coprocultura (cultura de fezes) é o exame das fezes para a pesquisa de microorganismos, parasitas e vírus no trato Gastro intestinal.