# data[].attributes.headline
PRÁTICA DE COLETA DE AMOSTRAS DO TRATO RESPIRATÓRIO SUPERIOR

# data[].attributes.subject
PRÁTICA DE COLETA DE AMOSTRAS DO TRATO RESPIRATÓRIO SUPERIOR

# data[].attributes.body
Foram feitas 3 amostras de infecção de pele que foram semeadas em ágar sangue

# data[].attributes.body
A coleta dever ser realizada em ambiente controlado, utilizando ferramentas estéreis para evitar contaminação cruzada evitando o contato em regiões adjacentes a fim de minimizar a contaminação de bactérias que fazem parte da microbiota.

As amostras foram transferidas diretamente para meios de cultura apropriados, assegurando o transporte adequado para preservar as características bacterianas.

# data[].attributes.body
As amostras foram cultivadas inicialmente em ágar sangue. Que é utilizado para avaliar a hemólise das bactérias, importante para diferenciar patógenos em cocos Gram-positivos, no qual todas apresentaram crescimento hemolítico.

# data[].attributes.body
Beta hemolítica

# data[].attributes.body
Beta hemolítica

# data[].attributes.body
Beta hemolítica

# data[].attributes.body
Não houve crescimento em ágar MacConkey (MC), confirmando a ausência de bactérias Gram-negativas.

# data[].attributes.body
Após cultivo em ágar sangue, observaram-se:

# data[].attributes.body
Circular, papilada, bordas inteiras, colônia grande e branca.

# data[].attributes.body
Circular, plana, bordas inteiras, colônia de tamanho pequeno a médio e branca.

# data[].attributes.body
Puntiforme, branca.

# data[].attributes.body
Objetivo: Determinar a coloração (Gram-positiva ou Gram-negativa) e a morfologia bacteriana.

# data[].attributes.body
Todas as amostras foram Gram-positivas e apresentaram morfologia de cocos.

# data[].attributes.body
Coloração diferencial com violeta de cristal, lugol, álcool e fucsina básica.

# data[].attributes.body
Objetivo: Diferenciar estafilococos (catalase-positivos) de estreptococos e enterococos (catalase-negativos).

# data[].attributes.body
A catalase é uma enzima que converte o peróxido de hidrogênio (H₂O₂) em água (H₂O) e oxigênio (O₂), liberado na forma de bolhas visíveis.

# data[].attributes.body
Os estafilococos possuem catalase, enquanto os estreptococos/enterococos não a produzem.

# data[].attributes.body
Positiva

# data[].attributes.body
Positiva

# data[].attributes.body
Negativo

# data[].attributes.body
Objetivo: Identificar espécies de Staphylococcus.  É um meio seletivo e diferencial para estafilococos; identifica a capacidade de fermentação do manitol.

# data[].attributes.body
Mecanismo: Bactérias como Staphylococcus aureus fermentam manitol, produzindo ácidos que reduzem o pH do meio, alterando a cor do indicador fenol red de vermelho para amarelo.

# data[].attributes.body
Cor amarela, indicando fermentação positiva (provável Staphylococcus aureus).

# data[].attributes.body
Crescimento sem fermentação (provável estafilococo coagulase-negativo).

# data[].attributes.body
-Objetivo: Identificar Staphylococcus aureus.

# data[].attributes.body
A coagulase é uma enzima que converte fibrinogênio em fibrina, causando a formação de um coágulo. Identifica Staphylococcus aureus, uma vez que apenas essa espécie de estafilococos é coagulase-positiva.

# data[].attributes.body
Positiva – Confirmado Staphylococcus aureus.

Amostra de cima

# data[].attributes.body
Negativa – Estafilococo coagulase-negativo

Amostra de baixo

# data[].attributes.body
Objetivo: Diferenciar estreptococos do grupo D e enterococos.

# data[].attributes.body
O teste baseia-se na capacidade de algumas bactérias, como enterococos e estreptococos do grupo D, de hidrolisar esculina na presença de bile.  A hidrólise da esculina produz glicose e esculetina. Esta última reage com íons férricos presentes no meio, formando um complexo negro difusível.

# data[].attributes.body
Positivo – Amostra hidrolisou a esculina, sugerindo Enterococcus spp.

# data[].attributes.body
Objetivo: Identificar enterococos pela tolerância a 6,5% de NaCl.

# data[].attributes.body
Enterococos possuem mecanismos celulares que lhes permitem sobreviver em ambientes de alta pressão osmótica, como bombas de transporte ativo e proteínas protetoras.

# data[].attributes.body
Positivo – Confirmada a tolerância ao sal, identificando Enterococcus spp.

Teste de turbidez positivo também

# data[].attributes.headline
Sequência Racional dos Testes e Justificativas 

# data[].attributes.subject
Sequência Racional dos Testes e Justificativas 

# data[].attributes.body
1. Coloração de Gram: Confirma a natureza Gram-positiva e morfologia.

2. Catalase: Diferencia estafilococos (positivos) de estreptococos/enterococos (negativos).

3. Coagulase (para catalase positiva): Identifica Staphylococcus aureus.

4. Fermentação de Manitol: Complementa a identificação de estafilococos.

5. Bile-esculina (para catalase negativa): Diferencia estreptococos do grupo D e enterococos.

6. Teste de NaCl 6,5%: Confirma Enterococcus spp.

# data[].attributes.headline
COLETA E SEMEADURA DE URINA – UROCULTURA E COPROCULTURA

# data[].attributes.subject
COLETA E SEMEADURA DE URINA – UROCULTURA E COPROCULTURA

# data[].attributes.body
O teste de sensibilidade à novobiocina foi realizado para a amostra 2, proveniente de uma infecção de pele. Esse teste é utilizado para diferenciar espécies de estafilococos coagulase-negativos (ECN), especialmente para identificar Staphylococcus saprophyticus, que é resistente à novobiocina. As outras espécies de ECN, geralmente sensíveis, são raramente isoladas em amostras clínicas humanas.

# data[].attributes.body
Amostra 1: Staphylococcus aureus

(catalase e coagulase positivas, fermentação de manitol positiva).

Amostra 2: Estafilococo coagulase-negativo.

Amostra 3: Enterococcus spp (catalase negativa, bile-esculina e teste de sal positivos).

# data[].attributes.body
O meio escolhido foi o ágar Mueller-Hinton (MH), que é amplamente usado em testes de sensibilidade antimicrobiana. Esse meio é padronizado e proporciona condições ideais para o crescimento uniforme dos microrganismos e a difusão eficaz do antibiótico.

O ágar MH possui baixa concentração de inibidores, como timina e timidina, que podem interferir nos testes de susceptibilidade.   Permite a reprodução uniforme de halos de inibição, garantindo resultados confiáveis.

# data[].attributes.body
Foi utilizada uma suspensão bacteriana ajustada ao padrão de turbidez 1 de McFarland, garantindo a concentração apropriada de microrganismos no teste:

- A suspensão bacteriana foi inoculada na superfície do ágar MH, garantindo cobertura uniforme.

- Foi colocado um disco de novobiocina (com concentração padronizada) no centro da placa.

- A placa foi incubada a 35-37°C por 24 horas.

- Após a incubação, foi observado um halo de inibição de 25 mm ao redor do disco de novobiocina.

# data[].attributes.body
No ágar Mueller-Hinton, que deveria ter tido o crescimento, não houve. Possivelmente ocorreu um problema com a preparação do meio, tornando inviável para o crescimento bacteriano.

# data[].attributes.body
Crescimento obtido em ágar sangue

# data[].attributes.body
- O halo de inibição de 25 mm indica que a amostra 2 é sensível à novobiocina.

- Com base nesse resultado, conclui-se que a amostra não corresponde a Staphylococcus saprophyticus, já que essa espécie seria resistente à novobiocina (halo ≤ 16 mm).

# data[].attributes.body
- Assim, a amostra pode ser classificada como outro estafilococo coagulase-negativo, como o S. epidermidis.

# data[].attributes.body
Tipo de amostra: Urina.

Possível infecção do trato urinário (ITU), frequentemente causada por microrganismos como Escherichia coli, Klebsiella spp., Proteus spp., Enterococcus spp., entre outros.

# data[].attributes.body
Tipo de amostra: Fezes.

Investigação de patógenos gastrointestinais como Salmonella spp., Shigella spp., Escherichia coli enteropatogênicas, Yersinia spp. e outros agentes entéricos.

# data[].attributes.body
Coletada por método de jato médio após higienização adequada da região genital, para evitar contaminação por flora da pele. Amostra deve ser transportada em recipiente estéril e analisada em até 2 horas ou mantida refrigerada a 4°C por no máximo 24 horas.

# data[].attributes.body
Coletada em recipiente estéril, sem contaminantes como urina ou água.

Amostra deve ser processada rapidamente ou mantida refrigerada para preservar a viabilidade dos microrganismos.

# data[].attributes.body
A única amostra de fezes utilizada na prática foi cultivada nos meios EMB, MC, HE, e SS

Ágar MacConkey (MC):

- Útil para diferenciar enterobactérias com base na fermentação de lactose.

Ágar Hektoen Enteric (HE):

- Seletivo para patógenos entéricos como Salmonella spp. (colônias pretas devido à produção de H₂S) e Shigella spp. (colônias verdes).

Mecanismo: Contém sais biliares para inibir o crescimento de Gram-positivas. Lactose, sacarose e salicina são os carboidratos diferenciais, com azul de bromotimol e fucsina ácida como indicadores de pH.

- Fermentadores produzem colônias alaranjadas (ácido).

- Não fermentadores produzem colônias verdes/transparentes.

- Tiossulfato de sódio e citrato férrico permitem a detecção de produção de H₂S (colônias pretas).

Ágar SS (Salmonella-Shigella):

- Meio altamente seletivo para Salmonella e Shigella.

- Salmonella apresenta colônias pretas, enquanto Shigella forma colônias translúcidas.

Mecanismo: Contém sais biliares e verde brilhante para inibir Gram-positivas e flora comensal. Lactose é o carboidrato diferencial, com vermelho neutro como indicador de pH.

- Fermentadores de lactose formam colônias rosa/vermelhas.

- Não fermentadores formam colônias transparentes.

- Tiossulfato de sódio e citrato férrico detectam produção de H₂S (colônias pretas).

Ágar EMB:

- Complementa a análise de fermentação de lactose e crescimento de Gram-negativos.

# data[].attributes.body
As duas amostras de urina foram cultivadas em MC, CLED, e EMB.

Ágar MacConkey (MC):

Meio seletivo e diferencial para bactérias Gram-negativas.  Permite identificar fermentadores de lactose.

Mecanismo: Contém sais biliares e cristal violeta, que inibem o crescimento de bactérias Gram-positivas, tornando o meio seletivo para Gram-negativas.  A lactose é o carboidrato disponível no meio, e o vermelho neutro é o indicador de pH. Bactérias que fermentam lactose produzem ácido, reduzindo o pH e resultando em colônias rosa/vermelhas. Bactérias que não fermentam lactose formam colônias incolores ou transparentes

Ágar CLED (Cystine Lactose Electrolyte Deficient)

- Meio diferencial para isolamento de cpatógenos urinários, inibindo efeito de eletrólitos que interferem no crescimento bacteriano e no diagnóstico. Diferencia fermentadores de lactose (colônias amarelas) e não fermentadores (colônias incolores).

Mecanismo: Lactose é o carboidrato diferencial e o azul de bromotimol é o indicador de pH. Fermentadores de lactose resultam em colônias amarelas (ácido), enquanto não fermentadores produzem colônias azuladas/incolores.

Ágar EMB (Eosina Azul de Metileno):

- Meio seletivo para Gram-negativos, permitindo diferenciar fermentadores de lactose com colônias de coloração metalizada (E. coli) de outros enterobactérias.

Mecanismo: Contém eosina e azul de metileno, que atuam como indicadores de pH e inibem o crescimento de Gram-positivas, tornando o meio seletivo para Gram-negativas. Fermentadores de lactose produzem ácido, alterando o pH e reagindo com os corantes para formar colônias coloridas.

# data[].attributes.body
A interpretação dos resultados da urocultura segue os critérios quantitativos estabelecidos por Kass, E.H. (1956). Segundo esses critérios:

Contagens abaixo de 10.000 UFC/ml são consideradas como microflora residente ou normal da uretra anterior.

Contagens entre 10.000 e 100.000 UFC/ml são classificadas como resultado duvidoso, devendo ser confirmadas por outros parâmetros, como sintomatologia clínica, presença de piócitos e número elevado de bactérias no sumário de urina.

Contagens superiores a 100.000 UFC/ml indicam infecção do trato urinário (ITU).

A presença de mais de um tipo de colônia no meio de cultura sugere possível contaminação da amostra.

# data[].attributes.body
Apresentou crescimento em ambos os meios e fermentação de lactose e glicose, indicando a presença de enterobactérias. O teste de oxidase foi realizado para confirmação, resultando positivo. A contagem de UFC/ml foi superior a 100.000, o que é indicativo de infecção urinária.

# data[].attributes.body
Apresentou forte crescimento nos dois meios, porém não fermentou lactose nem glicose, e foi negativa no teste de oxidase. As colônias roxas observadas no EMB e o brilho verde sugerem a presença de Escherichia coli.

# data[].attributes.body
Foi realizada análise de uma amostra de fezes utilizando diferentes meios de cultura, com os seguintes resultados:

MC (MacConkey): Não houve crescimento.

HE (Hektoen Enteric): A amostra 3 não apresentou coloração amarela no meio, como esperado, mas apresentou coloração verde.

MB (Methylene Blue): No EMB, as colônias apresentaram uma coloração rosa clara, indicando que a amostra não fermenta.

SS (Salmonella-Shigella): As colônias apresentaram coloração negra, o que indica a produção de H2S.

# data[].attributes.body
Os meios seletivos e diferenciais utilizados para a diferenciação de bactérias fermentadoras e não fermentadoras da lactose incluem:

MC (MacConkey) e EMB (Eosina-Azul de Metileno): Para diferenciar enterobactérias fermentadoras e não fermentadoras de lactose.

SS (Salmonella-Shigella) e HE (Hektoen Enteric): São meios seletivos utilizados para isolar Shigella spp. e Salmonella spp., inibindo outras enterobactérias.

Todas as provas indicam a presença de Salmonella.

# data[].attributes.headline
Provas de identificação de Enterobactérias

# data[].attributes.subject
Provas de identificação de Enterobactérias

# data[].attributes.body
Nessa prática, 3 amostras de fezes foram testadas em diferentes tubos.

Para os teste se usa uma agulha bacteriológica flambada, que encostar na superfície de uma colônia e inocular no tubo  por picada central até o fundo reto ou fazendo zig-zag.

Depois os tubos foram incubados em estufa bacteriológica entre 35 a 37ºC/18 a 24h.

# data[].attributes.body
Objetivo: Identificar a fermentação de glicose, produção de gás, produção de urease, produção de H2S e desaminação do L-triptofano.

Fermentação de glicose: Detecta a capacidade de fermentar glicose, mudando o pH do meio (vermelho → amarelo).

Produção de gás: Fissuras ou bolhas no meio indicam liberação de gás pela fermentação.

Urease: A hidrólise da ureia gera amônia, aumentando o pH e mudando o meio para rosa.

Produção de H2S: Detecta a produção de sulfeto de hidrogênio a partir de compostos sulfurados, formando um precipitado preto no fundo do tubo.

Desaminação do L-triptofano:  A desaminação do L-triptofano produz compostos como indol.

Adicionando reagente de Kovac's, a formação de um anel rosado no topo indica resultado positivo.

A1, A2 e A3 respectivamente

# data[].attributes.body
Objetivo: Avaliar a capacidade de descarboxilar a lisina. Diferencia enterobactérias que descarboxilam a lisina, como Salmonella

(positiva), de outras que não realizam essa reação, como Proteus.

Descarboxilação da lisina: ﻿Bactérias que descarboxilam lisina produzem cadaverina, um composto alcalino. Isso eleva o pH e muda a cor do meio de amarelo (negativo) para roxo (positivo).

# data[].attributes.body
Objetivo: Determinar motilidade, produção de indol e descarboxilação de ornitina.

Motilidade: Difusão do crescimento fora da linha de picada.

Indol: Detecta a degradação do triptofano; anel rosado com reagente de Kovac's confirma resultado positivo.

Ornitina: Bactérias que descarboxilam ornitina elevam o pH, mudando o meio de amarelo para roxo.

# data[].attributes.body
Objetivo: Verificar a fermentação do açúcar rhamnose.  Diferencia enterobactérias fermentadoras de rhamnose, como Escherichia coli (positiva) de não fermentadoras, como  Salmonella.

Mecanismo: Produção de ácidos pela fermentação reduz o pH, mudando o meio de vermelho para amarelo.

# data[].attributes.body
Objetivo: Avaliar a capacidade da bactéria de usar citrato como única fonte de carbono.

Diferencia espécies como Klebsiella (citrato positiva) de E. coli (citrato negativa).

Mecanismo: Uso de citrato gera amônia, aumentando o pH e mudando a cor do meio de verde para azul.

# data[].attributes.body
Objetivo: Detectar a desaminação da fenilalanina em fenilpiruvato.

Mecanismo: O fenilpiruvato reage com cloreto férrico, formando coloração verde.

# data[].attributes.headline
VM/VP (Vermelho de Metila e Voges-Proskauer) 

# data[].attributes.subject
VM/VP (Vermelho de Metila e Voges-Proskauer) 

# data[].attributes.body
Objetivo: Determinar a via de fermentação de glicose: ácidos mistos (VM) ou butanodiol (VP).

Provas:

Teste VM: Adiciona-se vermelho de metila; cor vermelha indica produção de ácidos mistos.

Teste VP: Adicionam-se reagentes VP A e VP B; cor avermelhada indica produção de acetona (via butanodiol).

# data[].attributes.body
Com base nos resultados utilizado um aplicativo própria a indicação de resultado foi:

Amostra 1: E. coli

Amostra 2: Proteus mirabilis

Amostra 3: Salmonella spp