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¿Cuál es la aplicación de las técnicas de citogenética molecular? 

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¿Cuál es la aplicación de las técnicas de citogenética molecular? 

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Las técnicas de citogenética molecular se utilizan para estudiar el ADN y los cromosomas con alta precisión. Sus principales aplicaciones incluyen:

1. Diagnóstico de enfermedades genéticas

Detectan anomalías cromosómicas como microdeleciones, duplicaciones y translocaciones que no se ven con un cariotipo convencional.

Se utilizan para diagnosticar síndromes como el síndrome de DiGeorge, Prader-Willi, Angelman, entre otros.

2. Diagnóstico prenatal

Identifican alteraciones cromosómicas en embriones o fetos (por ejemplo, síndrome de Down) mediante técnicas como FISH y arrays.

3. Estudios oncológicos

Ayudan a detectar alteraciones genéticas en cánceres hematológicos (como leucemias) y tumores sólidos.

Permiten hacer pronósticos y seguir la evolución del tratamiento.

4. Evaluación de infertilidad y abortos espontáneos

Analizan alteraciones cromosómicas en padres o productos abortivos para explicar la causa de infertilidad o pérdidas gestacionales recurrentes.

5. Investigación y tipificación de síndromes genéticos

Diferencian entre variantes genéticas patogénicas y polimorfismos benignos.

6. Seguimiento de tratamientos

Sirven para monitorear la enfermedad mínima residual en pacientes con cáncer.

REFERENCIA:

Álvarez M, García R, Sánchez J. Resumen de la evolución de las técnicas de citogenética y genética molecular. Medicina de Familia. SEMERGEN. 2011;37(5):247–252. Disponible en: https://www.elsevier.es/es-revista-medicina-familia-semergen-40-articulo-resumen-evolucion-tecnicas-citogenetica-genetica-S1138359310003199

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¿Cuáles son las posibilidades de la citogenética molecular con Hibridación por fluorescencia in situ (FISH) en los laboratorios de citogenética?

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¿Cuáles son las posibilidades de la citogenética molecular con Hibridación por fluorescencia in situ (FISH) en los laboratorios de citogenética?

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Las posibilidades de la citogenética molecular con Hibridación por Fluorescencia In Situ (FISH) en los laboratorios de citogenética son amplias y fundamentales para el diagnóstico genético y oncológico. Entre sus principales aplicaciones destacan:

Diagnóstico de alteraciones cromosómicas

Diagnóstico prenatal y postnatal

Evalúa amplificaciones génicas

Detecta translocaciones cromosómicas y fusiones génicas

Referencia

Speicher, M. R., & Carter, N. P. (2005). The new cytogenetics: blurring the boundaries with molecular biology. Nature Reviews Genetics, 6(10), 782-792. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16145555/

Liehr, T. (2018). FISH: a practical approach. Springer. https://www.researchgate.net/publication/375244037_Fish_A_Practical_Approach

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¿Qué criterios debo considerar para realizar e interpretar el bandeo cromosómicо?

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¿Qué criterios debo considerar para realizar e interpretar el bandeo cromosómicо?

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Criterios técnicos para la ejecución del bandeo cromosómico

1. Selección de la muestra biológica

Generalmente, se utiliza sangre periférica para obtener el aislamiento de linfocitos, aunque también pueden emplearse otras muestras como líquido amniótico y médula ósea.

2. Cultivo celular

Los linfocitos se cultivan en medios específicos y se estimulan con mitógenos como la fitohemaglutinina para inducir la entrada en mitosis, facilitando así la obtención de cromosomas en metafase, que es la fase ideal para el análisis citogenético.

3. Detención de la mitosis

Se utiliza colchicina o el colcemid ya que estas interfieren con la polimerización del huso mitótico para asi detener las células en metafase, etapa en la que los cromosomas están más condensados y son más fácilmente analizables.

4. Tratamiento hipotónico

Las células se someten a una solución hipotónica (por ejemplo, KCl 0.075 M) para hincharlas promoviendo una adecuada dispersión cromosómica sobre el portaobjetos , facilitando la dispersión de los cromosomas en el portaobjetos al momento de la extensión.

5. Fijación y extensión celular

Las células se fijan con una mezcla de metanol y ácido acético lo cual preserva la morfología cromosómica. Posteriormente se extienden en el portaobjetos mediante técnicas controladas que evitan la superposición cromosómica para su posterior tinción.

6. Tinción y bandeo cromosomico

Se aplica la técnica de bandeo G (GTG), que involucra una digestión enzimática suave con tripsina seguida de tinción con Giemsa. Este procedimiento permite revelar un patrón de bandas alternas claras y oscuras, específico para cada cromosoma.

7. Análisis en alta resolución

Para estudios más detallados, se analiza el cariotipo en prometafase, cuando los cromosomas aún no están completamente condensados. Esta técnica permite observar un número superior de bandas, lo cual incrementa la sensibilidad para detectar microdeleciones y reordenamientos submicroscópicos.

Criterios interpretativos del bandeo cromosómico

1. Identificación cromosómica

Mediante el análisis de los patrones de bandeo, se identifican individualmente los cromosomas, permitiendo detectar tanto alteraciones numéricas como estructurales.

2. Clasificación de anomalías cromosómicas

Alteraciones numéricas: Incluyen ganancias o pérdidas de cromosomas completos, como en el caso de las trisomías o monosomías.

Alteraciones estructurales: Comprenden reordenamientos como deleciones, duplicaciones, translocaciones, inserciones o inversiones, que pueden ser balanceadas o no balanceadas desde el punto de vista genético.

3. Determinación del nivel de resolución

La resolución del bandeo es fundamental para la detección de alteraciones de pequeño tamaño. Un análisis de alta resolución es ideal para identificar variaciones estructurales.

4. Interpretación clínica integrada

La evaluación citogenética debe correlacionarse con el contexto clínico del paciente. Es indispensable integrar los hallazgos con antecedentes personales y familiares, así como con fenotipos y estudios moleculares complementarios.

5. Validación diagnóstica

En casos con anomalías complejas o hallazgos dudosos, se recomienda complementar el estudio con técnicas de citogenética molecular, como la hibridación in situ fluorescente (FISH) o la hibridación genómica comparativa (CGH-array), para una mayor precisión diagnóstica.

REFERENCIA BIBLIOGRAFICA

Cibic Laboratorios. (2017). Citogenética: Cariotipo de Alta Resolución. Recuperado el 25 de mayo de 2025, de https://www.cibic.com.ar/laboratorios-bioquimicos/citogenetica-cariotipo-de-alta-resolucion/

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¿Qué técnicas de citogenética convencional podrían ser seleccionadas en estudios citogenéticos y por que?

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¿Qué técnicas de citogenética convencional podrían ser seleccionadas en estudios citogenéticos y por que?

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Técnicas de citogenética convencional

Las principales técnicas utilizadas en estudios citogenéticos convencionales incluyen:

Cariotipo con bandeo G: Detecta alteraciones numéricas y estructurales grandes como trisomías, translocaciones y deleciones.

Bandeo C: Identifica regiones de heterocromatina (como el centrómero) y cromosomas marcadores.

Bandeo NOR: Resalta regiones organizadoras del nucléolo, útil en estudios de actividad nucleolar.

Bandeo Q: Tiñe regiones fluorescentes, útil para el cromosoma Y y heterocromatina.

Tinción con Giemsa sin bandeo: Permite observar la forma general de los cromosomas rápidamente.

Estas técnicas se eligen por ser accesibles, económicas y eficaces para detectar alteraciones cromosómicas visibles al microscopio.

Referencia: González ME, Ramírez M, Castro D. Citogenética humana y genética médica. 2.ª ed. Ciudad de México: McGraw-Hill Interamericana; 2016.

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¿Qué tipo de estudios citogenéticos requieren realizar cultivos celulares? ¿Qué células pueden cultivarse para estudios citogenéticos?

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¿Qué tipo de estudios citogenéticos requieren realizar cultivos celulares? ¿Qué células pueden cultivarse para estudios citogenéticos?

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Los estudios citogenéticos que requieren cultivos celulares son aquellos que necesitan analizar cromosomas en metafase para evaluar su estructura, número y posibles anomalías. Los cultivos permiten obtener células en división activa, esenciales para técnicas como el cariotipo convencional, bandeo G, FISH (Hibridación In Situ Fluorescente) y estudios de alta resolución cromosómica.

Tipos de estudios citogenéticos que utilizan cultivos celulares:

1. Cariotipo convencional:

Analiza la morfología y número de cromosomas mediante tinción y observación microscópica.

Requiere detener las células en metafase mediante cultivos.

2. FISH (Hibridación In Situ Fluorescente):

Detecta anomalías específicas (deleciones, translocaciones) usando sondas fluorescentes.

Se aplica en leucemias, cánceres y diagnóstico prenatal.

3. Estudios de alta resolución:

Permiten visualizar detalles finos de los cromosomas mediante técnicas de bandeo avanzado.

4. Diagnóstico prenatal:

Cultivo de células del líquido amniótico o trofoblasto para detectar anomalías cromosómicas fetales (ej. síndrome de Down).

Células cultivables para estudios citogenéticos:

Sangre periférica: Linfocitos T estimulados con mitógenos para activar su división.

Médula ósea: Células hematopoyéticas en casos de trastornos hematológicos.

Líquido amniótico: Células fetales descamadas para diagnóstico prenatal.

Tejidos sólidos:

Fibroblastos de biopsias de piel.

Trofoblasto (vellosidades coriónicas) en estudios prenatales.

Restos ovulares o tejidos tumorales.

Estos cultivos se realizan en condiciones estériles, usando medios específicos (ej. Amiomax para líquido amniótico), y permiten calcular índices como el índice mitótico (actividad proliferativa) y el índice de poliploidías (células con anomalías numéricas). La elección del tipo celular depende del objetivo clínico, como diagnóstico de enfermedades genéticas, seguimiento de cáncer o evaluación de fertilidad.

Referencias:

ESTUDIOS CITOGENÉTICOS. (2021, enero 7). Recuperado el 25 de mayo de 2025, de Biogensalta.com website: https://biogensalta.com/estudios-citogeneticos/

FUNDAMENTOS DE CITOGENÉTICA HUMANA Y ANIMAL (2018). Recuperado el 25 de mayo de 2025, de Edu.co website: https://libros.unad.edu.co/index.php/selloeditorial/catalog/download/100/91/397?inline=1