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-Método de Kato-Katz

Princípio: Este método envolve a preparação de uma amostra espessa de fezes em uma lâmina de microscópio, utilizando uma moldura que padroniza a quantidade de fezes analisada. As fezes são cobertas com uma célula de gliceraldeído e, após um período de tempo, os ovos de helmintos são contados.

Finalidade: É utilizado para quantificar ovos de helmintos como Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, e esquistossomose. É especialmente útil em áreas endêmicas para determinar a intensidade da infecção.

-Método de Stoll

Princípio: Este método envolve a diluição seriada de uma amostra de fezes em uma solução salina e, em seguida, a contagem de ovos em uma alíquota conhecida dessa diluição. A quantidade de ovos é então extrapolada para a quantidade total de fezes.

Finalidade: É utilizado para a quantificação precisa da carga parasitária, especialmente em infecções por helmintos. É um método sensível e pode ser usado para uma ampla gama de parasitas.

-Método de McMaster

Princípio: Neste método, uma alíquota de fezes é misturada com uma solução de açúcar ou sal, e a mistura é colocada em uma câmara de contagem de McMaster. Os ovos flutuam para a superfície e são contados sob o microscópio.

Finalidade: É usado principalmente em medicina veterinária, mas também pode ser aplicado em humanos para a quantificação de ovos de helmintos. É útil para determinar a carga parasitária de forma rápida e eficiente.

-Método de Dennis, Stone e Swanson (DSS)

Princípio: Este método envolve a homogeneização de uma amostra de fezes em uma solução de formalina e a filtração da suspensão. A suspensão filtrada é então centrifugada, e o sedimento é examinado ao microscópio para contagem de ovos.

Finalidade: É usado para quantificar ovos de helmintos em estudos epidemiológicos e clínicos.

-Método de Técnica de Coproantígeno

Princípio: Este método detecta antígenos parasitários nas fezes utilizando ensaios imunoenzimáticos (ELISA). A quantidade de antígeno correlaciona-se com a carga parasitária.

Finalidade: É usado para a detecção e quantificação de parasitas como Giardia lamblia, Entamoeba histolytica e Cryptosporidium spp. É especialmente útil para parasitas que são difíceis de detectar ou quantificar diretamente pelos métodos tradicionais.

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-Método de Sedimentação (Ritchie)

Princípio: Utiliza a diferença de densidade entre os parasitas e o meio de sedimentação. A amostra de fezes é misturada com uma solução conservante e centrifugada. Os parasitas sedimentam no fundo do tubo, onde podem ser coletados e examinados ao microscópio.

Finalidade: Detecção de ovos de helmintos e cistos de protozoários, especialmente em amostras com baixa concentração de parasitas.

-Método de Flutuação (Willis)

Princípio: Baseia-se na flutuação de ovos de parasitas em uma solução de alta densidade (geralmente uma solução saturada de sal ou açúcar). A amostra de fezes é misturada com a solução de flutuação, e os ovos flutuam para a superfície, onde podem ser recolhidos e examinados.

Finalidade: Detecção de ovos de helmintos leves, como os de Ascaris lumbricoides e Ancylostoma spp.

-Método de Faust (Flutuação por Solução de Sulfato de Zinco)

Princípio: Utiliza uma solução de sulfato de zinco para flutuar os cistos de protozoários e ovos de helmintos. A amostra de fezes é misturada com a solução e centrifugada. Os parasitas flutuam para a superfície, onde podem ser recolhidos e examinados.

Finalidade: Detecção de cistos de protozoários e alguns ovos de helmintos.

-Método de Kato-Katz

Princípio: Envolve a preparação de uma amostra espessa de fezes utilizando uma moldura padronizada e uma célula de gliceraldeído. A lâmina é examinada após um período de tempo, permitindo a visualização dos ovos de helmintos.

Finalidade: Identificação de ovos de helmintos como Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura e esquistossomose. Este método é semi-quantitativo, mas é frequentemente utilizado para detecção qualitativa.

-Método de Baermann

Princípio: Baseia-se na capacidade das larvas de helmintos de se moverem ativamente para fora de uma amostra de fezes quando submersas em água morna. As larvas são coletadas após um período de incubação e examinadas ao microscópio.

Finalidade: Detecção de larvas de Strongyloides stercoralis e outros nematódeos.

-Método de Graham (Fita Adesiva)

Princípio: Utiliza fita adesiva transparente aplicada na região perianal para coletar ovos de Enterobius vermicularis (oxiúros). A fita é então examinada ao microscópio.

Finalidade: Detecção de ovos de Enterobius vermicularis.

-Exame Direto a Fresco

Princípio: Envolve a mistura de uma pequena quantidade de fezes com solução salina ou água destilada em uma lâmina de microscópio, seguida de observação imediata ao microscópio.

Finalidade: Detecção de trofozoítos móveis de protozoários, cistos, ovos e larvas. É uma técnica rápida e simples, usada para diagnósticos iniciais

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1. Preparação de amostras (fixação, coloração)

2. Observação de parasitas sob o microscópio

1. Ovos

2. Larvas

3. Protozoários

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Observação de características visíveis:

1. Cor

2. Consistência

3. Presença de sangue

4. Presença de muco

5. Presença de parasitas visíveis

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-Uso de recipientes estéreis

-Coleta adequada para evitar contaminação

-Armazenamento e transporte corretos

-Coleta em diferentes dias, se necessário

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-Diagnóstico de infecções intestinais

-Detecção de parasitas (ovos, larvas, protozoários)

- Identificação de bactérias patogênicas

- Monitoramento da flora intestinal

-Avaliação de problemas digestivos e de absorção

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Técnicas para o exame parasitológico de amostras de fezes.

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Técnicas para o exame parasitológico de amostras de fezes.