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Javiera Caroca.

Daniela Contreras.

Marcos Contreras.

Camila Soto.

Catalina Farías.

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En la imagen: Elementos utilizados durante el práctico de animales pequeños, entre ellos un modelo anatómico usado para auscultación de corazón y pulmón. 

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La práctica se llevó a cabo en salas de la universidad, las cuales contaban con la implementación necesaria para realizar la actividad.

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En la imagen: Se muestra el uso de implementos de seguridad por todo el grupo. 

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Es necesario el uso de traje clínico para proteger tanto al profesional como a los pacientes de la propagación de infecciones. Debido a la pandemia de COVID-19 se debe ocupar mascarilla, pechera desechable y escudo facial, implementos que en esta ocasión fueron utilizados en todo momento por los integrantes y monitora.

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En la imagen: Caja de seguridad para desechar elementos cortopunzantes. 

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El manejo de los desechos corto punzantes es de suma importancia para la seguridad de profesional, el paciente y la comunidad. Para esto se utilizan cajas de seguridad en donde se depositan de forma segura.
Se debe tener en consideración los autocuidados al manejar al paciente, para esto se debe contar con bozales, mantas o cualquier elemento de sujeción necesario para manejarlo sin ser lastimado. Para salvaguardar la bioseguridad es necesario el uso de guantes, pechera y/o cualquier elemento protectivo necesario.

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En la imagen: Integrante realizando método de contención en paciente canino. 

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Conductas de normalidad o riesgos para el médico veterinario

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Conductas de normalidad o riesgos para el médico veterinario

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Siempre se debe estar atento al comportamiento del paciente, permitirle reconocer la consulta, tener una actitud tranquila y segura. Cuando sea el momento de manejarlo  debemos acercarnos por lateral con tranquilidad dejando que nos huela. Si el paciente no se deja manipular, se deben utilizar métodos de contención los cuales serán diferentes según la especie de la que se trate.

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El examen clínico comienza en la puerta de la consulta, por ejemplo, podemos ver la actitud del paciente (si está decaido, ansioso, tranquilo, etc).
Comenzaremos a examinar desde la cabeza hacia atrás, idealmente siguiendo un orden preestablecido (el que nos acomode más a nosotros), de esta forma el exámen es más metodológico y eficiente.

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En la imagen: Ficha con algunos parámetros fisiológicos. 

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Frecuencia cardiaca
-En perros: 60-140 latidos/min.
-Raza grande: 60-120 latidos/min.
-Raza pequeña: 80-140 latidos/min.
-En gatos: 140-220 latidos/min.
Frecuencia respiratoria
-En perros: 15-40 respiraciones/min.
-En gatos: 20-60 respiraciones/min.
Temperatura 38-39.2°C
PAS 100-130 mmHg
PAD 60-100 mmHg
PAM 60-65 mmHg
TLLC <2"
Pliegue cutáneo 1 "
Producción de orina20-40 ml/kg/día.
Glicemia 80-120
Lactato <2mmol/L

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En la imagen: Ilustración del método de contención en gatos. 

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Para la contención en gatos existe la técnica de la toalla, en donde se envuelve al animal de forma de restringir su movimiento, la presión ejercida debe ser suficiente para evitar que mueva las patas pero no exagerada como para producir daño, ésta técnica puede brindarle una sensación de seguridad al gato y nos permite realizar la extracción de sangre de las extremidades posteriores así como otros manejos veterinarios.

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En la imagen: Ficha en donde se muestran los puntos que delimitan el área de auscultación respiratoria. 

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La respiración es costo abdominal sincrónica, la auscultación respiratoria se realiza en un área determinada (que adquiere forma de trapecio), los puntos que la delimitan se especifican en la imagen, las frecuencias respiratorias varían entre las especies e incluso entre razas, siendo importante tener en cuenta los parámetros adecuados para el paciente a la hora de interpretar los resultados.

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En la imagen: Integrante realizando auscultación en perro. 

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Para realizar una correcta auscultación cardiaca debemos posicionar al paciente de manera tal, que este quede sentado y relajado en lo posible. Los espacios de auscultación en el perro y el gato van desde el 3er EIC al 5to EIC. Si auscultamos por el lado izquierdo, entre el 3er y 5to EIC podremos escuchar la válvula pulmonar, aórtica y mitral (a lo que se le denomina PAM), en cambio por el lado derecho en el 4to EIC escucharemos el abrir y cerrar de la válvula tricúspide.

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En la imagen: Se realizó una canulación en un fantoma. 

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El ingreso de la aguja se realiza en 45°, cuando comienza a salir sangre se empuja el teflón de forma paralela a la vena con ayuda del dedo. Una vez que el teflón ingresa se coloca una tapa de heparina, para posteriormente fijar con cintas adhesivas en la dirección de enrosque, tanto en la tapa como en el teflón.

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En la imagen: Esquema de cómo poner un bozal en perro. 

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Para contener a un paciente canino se debe contar con un bozal. Si no hay disponibilidad de este, se puede realizar uno con gasa siguiendo los pasos señalados en la imagen.
La forma mas segura de abordar a un paciente canino es con la ayuda de otra persona, ya sea otro veterinario, enfermero o tutor.

Si el paciente aún teniendo bozal no se deja manipular, un ayudante debe sujetarlo por lateral pasando el brazo por debajo de la cabeza para así sujetarla. El otro brazo pasará por arriba del animal a modo de abrazo, asegurando de esta forma, que el examen clinico y/o paso de farmacos vía SC,EV o IM sean ejecutadas de una forma segura tanto para el paciente como para las personas que están a su alrededor.

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En la imagen: Variedad de tubos de toma de muestra. 

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Las muestras de sangre venosa se recolectan en una variedad de tubos dependiendo del propósito que se tenga con esta, también, dependerá del tipo de examen. Por ejemplo, como se puede ver en esta imagen:
- Tubo tapa celeste: contiene citrato de sodio y sirve para realizar exámenes como un panel de coagulación y para evaluar la actividad del factor de Von Willebrand.
- Tubo tapa roja: contiene activador de la coagulación y sirve para realizar exámenes como un perfil bioquímico, perfil lipídico y análisis de hormonas T4 y TSH.
- Tubo tapa morada: contiene EDTA y sirve para realizar exámenes como un hemograma, recuento de reticulocitos y plaquetas, tipificación de grupo sanguíneo y para la detección de retrovirales felinos, distemper, leptospira y mycoplasma.
- Tubo tapa gris: contiene fluoruro sodio/oxalato de calcio y sirve para realizar pruebas de glicemia.

El último frasco de tapa roja se usa para la recolección de muestras de orina.

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En el video: Explicación de cómo abordar al paciente para la extracción de sangre. 

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Para la toma de muestra sanguínea es importante posicionar al paciente de forma adecuada, con una mano se recomienda sujetar la cabeza del paciente contra nosotros y con ayuda del otro brazo sujetar el cuerpo para bloquear el codo y presionar para dar vía, en el caso de extraer sangre de la vena cefálica. Otro sitio de extracción es la vena safena externa, en este caso se debe bloquear la rodilla.
Por otro lado, si se quiere extraer sangre desde la vena yugular, idealmente se debe contar con un bozal o algún otro método de contención.

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En la imagen: Esquema sobre cómo realizar los cálculos de dosis. 

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Los cálculos de dosis serán guiados a partir del principio activo del fármaco (mg), por el peso corporal del animal, edad del animal, especie animal.
Tener en cuenta que el paciente al examen clínico debe presentar signos normales de hidratación, por ejemplo, un TLLC de 1", pliegue cutáneo de 2" como máximo, mucosas rosadas pálidas, esto con el fin de no provocar daño a nivel renal o intoxicación por el fármaco.

Para administrar el fármaco se debe pasar de miligramo a mililitros, teniendo en cuenta el peso del animal. Se logra a través de una regla de 3 simple o en base de una fórmula.
Ejemplo para utilizar la fórmula: administrar Meloxicam en perro de 15 kg.
-Peso del paciente: 15 kg.
-Dosis del fármaco: para perro: dosis inicial es de 0,2 mg/kg.
-Presentación del fármaco: solución oral, suspensión de 1,5 mg/ml para perro.

Cálculo: peso del paciente x dosis / presentación= 15kgx0,2mg/kg=3mg / 1,5mg/ml= 2ml

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En la imagen: Integrante ensamblando una bajada de suero. 

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Para realizarla, se requiere de la bolsa de suero, la cual se conecta con la bajada de suero (utilizando macrogota o microgota según corresponda al paciente) y esta a su vez con la llave de tres pasos, que se puede regular para administrar sólo suero o medicamentos o ambos juntos. Finalmente, esta llave se conecta con la mariposa, la cual es una aguja que se le pondrá al paciente en la vía de administración.

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En el video: Explicación de cómo extraer sangre en paciente felino. 

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Para la extracción de sangre se prefiere usar la vena safena interna como primera opción, luego la vena cefálica, vena yugular y, por último la vena safena externa.
La mejor opción de manejo para la extracción de sangre o ingreso de fluidos vía endovenosa es envolver al gato en su totalidad, cubriendo también la cabeza, dejando expuesto solamente el miembro posterior el cual utilizaremos para la extracción o ingreso de fluidos.

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En el video: Integrante realizando compresiones rítmicas en modelo canino. 

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La técnica de RCP o resucitación cardiopulmonar es una combinación entre compresiones de pecho o masaje cardiaco y respiración artificial.
Este procedimiento consiste en realizar de 100 a 120 compresiones rítmicas por minuto sobre la caja torácica en el área del corazón, colocando una mano sobre la otra procurando no flexionar los codos durante las compresiones y tratando de bajar 1/3 del tamaño del paciente.
En cuanto a la estimulación del campo respiratorio se estima realizar una respiración cada 6 segundos, lo ideal es que ambos procedimientos se ejecuten en conjunto, por lo que es necesario contar con mas personas competentes para los procesos de respiración, presión, RCP, canulación y administración de fármacos.

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En la imagen: Integrante realizando la intubación endotraqueal en modelo canino. 

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La intubación endotraqueal además de ser un procedimiento para proteger la vía aérea y dar soporte vital al paciente anestesiado, es una medida esencial en la reanimación cardiopulmonar.
Para su realización, en primer lugar se debe medir el tubo según el paciente, luego con el laringoscopio se llega a la base de la lengua para bajarla y así encontrar la tráquea. Con una jeringa se deja un vacío en el balón de control y siguiendo la curva del tubo se ingresa suavemente, quedando a la altura de los caninos. Luego con la jeringa se ingresa aire por el balón para que el tubo quede fijado, el ingreso de aire debe ser aproximadamente hasta que se sienta un poco inflado (que el balón quede con una textura similar a plásticina) para finalmente posicionarlo en el paciente con un elástico.

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Las actividades prácticas realizadas durante la sesión son esenciales para nuestro desarrollo como profesionales, esto nos permite integrar nuestros conocimientos teóricos y aplicarlos.
Junto con el conocimiento teórico podemos apuntar a ser veterinarios competentes con la actualidad médica veterinaria del país. Si bien, se utilizaron ejemplares de estudio y no animales, se pusieron en práctica procedimientos clínicos básicos a aplicar en futuros pacientes, lo cual fue complementado con otros métodos de aprendizaje tales como material audiovisual, dibujos explicativos e imágenes.
Por otro lado, cabe destacar el conocimiento y la buena disposición de la tutora que nos facilitó el paso práctico, siendo clara en explicar los contenidos y repitiendo si teníamos una duda.