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Semeadura por esgotamento em ágar sangue e ágar McConkey para identificação de bactéria beta/alfa/gama hemolítica e gram positivo ou negativo, respectivamente. Amostra 3: infecção cutânea crônica que não respondeu a antibiótico inicial cefalexina.

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Semeadura por esgotamento em ágar sangue e ágar McConkey para identificação de bactéria beta/alfa/gama hemolítica e gram positivo ou negativo, respectivamente. Amostra 1: abcesso cutâneo com secreção purulenta. 

# data[].attributes.body
A amostra evidenciou a presença de uma bactéria beta hemolítica mas que apresentou as colônias com tamanho pequeno. Além disso, o esperado para ess amostra eram bactérias gama hemolíticas, mas algumas gama hemolíticas também são beta hemolíticas.

Logo, seguiremos a rota de testes dos estreptococcos gama hemolíticos.

# data[].attributes.body
A cultura mostrou bactérias com tamanho da colônia grande de aspecto cremoso e característica beta hemolítica.

# data[].attributes.body
Semeadura por esgotamento em ágar sangue e ágar McConkey para identificação de bactéria beta/alfa/gama hemolítica e gram positivo ou negativo, respectivamente. Amostra 2: infecção de sítio cirúrgico.

# data[].attributes.body
A amostra 2 evidenciou bactérias com colônias de tamanho médio, com aspecto cremoso e com característica beta hemolítica.

# data[].attributes.body
O crescimento não era previsto pois as bactérias que normalmente causam infecção de sítio cirúrgico são gram-positivas. O resultado confirmou a previsão.

# data[].attributes.body
A amostra 2 teve a formação de bolhas sustentadas e, dessa forma, o teste de catalase deu positivo. A catalase positiva evidencia a possibilidade de cocos gram-positivos na amostra.

A prova da catalase dando positiva indica que a bactéria é do grupo Staphylococcus. Dessa forma, seguimos para o teste da coagulase para identificação das espécies.

# data[].attributes.attachment_caption
Essa prova tem como finalidade identificar se o microorganismo é capaz de converter fibrinogênio em fibrina. A formação de um coágulo é positivo e a não formação do coágulo mostra que o teste foi negativo.

# data[].attributes.body
O resultado da coagulase da amostra foi negativo, não houve a formação de coágulo.

(esquecemos de tirar foto)

A coagulase negativa indica que não é o S. aureus, a cultura em ágar sal manitol vai garantir maior certeza á esse achado.

# data[].attributes.body
Percebe-se uma coloração avermelhada, o que significa que não teve fermentação do meio de cultura, porém teve crescimento bacteriano (formação de colônias visíveis).

Dessa forma, a bactéria presente é do gênero staphylococcus (cresceu em ágar (MSA)).

Porém, com o resultado da coagulase negativa, é necessário realizar o teste de sensibilidade à novobiocina.

# data[].attributes.body
A prova da Novobiocina é utilizada para diferenciação das espécies S. saprophyticus (resistente ao antibiótico), S. epidermidis e S. haemolyticus (sensíveis ao antibiótico).

O resultado é dado medindo o tamanho do halo formado:

Igual ou menor que 15 mm: resistente.

Igual ou maior que 16 mm: sensível.

# data[].attributes.body
Para realizar o teste de sensibilidade à Novobiocina, colônias da amostra 2 foram coletadas com uma alça descartável e suspensas em um tubo com solução salina. A suspensão foi então homogeneizada em um vórtex até atingir a turbidez do padrão 1,0 de MacFarland.

Em seguida, a suspensão bacteriana foi inoculada na superfície da placa de ágar Mueller Hinton com o auxílio de um swab.

# data[].attributes.body
Para finalizar, um disco de novobiocina foi posicionado sobre a área semeada e, com o auxílio de uma pinça flambada, pressionado para garantir sua adesão à superfície do ágar. Em seguida, a placa foi levada à incubadora.

# data[].attributes.headline
Resultado da Sensibilidade à Novobiocina

# data[].attributes.subject
Resultado da Sensibilidade à Novobiocina

# data[].attributes.body
O resultado da medição do halo foi de 27 mm de diâmetro, ou seja, a bactéria é sensível à novobiocina. Portanto, as duas possibilidades para essa amostra são S. epidermidis e S. haemolyticus.

OBS: o teste em ágar não deu certo (como o previsto). Para resolver o problema, fizemos também em ágar sangue, que permitiu a visualização e a medição do halo.

# data[].attributes.body
Para esse teste foi usado o cristal de violeta, por 1 mim, lugol, por 1 mim e a fluoxina por 30 segs. Na sequencia foi feita a lavagem da lamina para posterior secagem e análise em microscópio.

# data[].attributes.body
Houve um leve crescimento na placa evidenciando uma possível contaminação que foi confirmada posteriormente através da realização de uma nova placa teste com a mesma amostra.

# data[].attributes.body
A amostra apresentou uma leve formação de bolhas, mas como não foram sustentadas o teste foi tido como negativo.

# data[].attributes.headline
Teste de Bile Esculina e Tolerância ao Sal

# data[].attributes.subject
Teste de Bile Esculina e Tolerância ao Sal

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O teste de Bile esculina é positivo quando o meio fica escuro e indica que a bactéria presente é do grupo Enterococcus e Estreptococcus do grupo D.

O teste de Tolerância ao Sal 6,5% NaCl é positivo quando o meio líquido em que foi semeada a amostra muda de límpido para turvo, evidenciando o crescimento bacteriano. A positividade desse teste indica que a bactéria pertence ao grupo Estreptococcus do grupo D não Enterococcus.

# data[].attributes.body
Para o preparo dessa amostra foi coletada 1 colônia da amostra 3 do ágar sangue e inoculada sobre ágar inclinado do meio com bile esculina.

# data[].attributes.body
A realização desse teste ocorreu devido a resistência aos antibióticos da paciente.

Observa-se um meio de cultura preto (produto de hidrolise da esculina), evidenciando a "positividade" para o teste de bile esculina, pois sua cor natural é marrom claro.

Porém o resultado positivo da bile esculina pode ser referente a uma bactéria tanto do grupo dos Estreptococcus e Enterococcus do grupo D quanto Estreptococcus do grupo D não Enterocócitos.

Logo, para diferencia-los precisa fazer o teste do caldo de NaCl 6,5%.

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Teste de tolerância ao sal com caldo de 6,5% NaCl

# data[].attributes.subject
Teste de tolerância ao sal com caldo de 6,5% NaCl

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Para esse teste, coletamos cerca de 2 a 3 colônias das placas contendo as amostras e semeamos no caldo de 6,5% NaCl.

O objetivo desse teste é diferenciar as espécies de Enterococcus dos Estreptococcus do grupo D não enterocócitos.

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Observa-se predominância de cocos gram-positivos em cachos característicos do grupo Staphylococcus.

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Com base nos testes realizados e nos resultados obtidos as possíveis bactérias são o S. epidermidis ou o S. haemolyticus.

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Lâmina da bactéria S. Pneumoniae para comparação

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Lâmina da bactéria S. Pneumoniae para comparação

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Observa-se predominância de cocos aos pares e alguns sozinhos característico do Streptococcus Pneumoniae.

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O crescimento não era previsto pois as bactérias que normalmente causam abcesso cutâneo com secreção purulenta são gram-positivas. O resultado confirmou a previsão.

# data[].attributes.body
A amostra teve a formação de bolhas sustentadas e, dessa forma, o resultado deu positivo. A positividade do teste indica que há a presença de cocos gram-positivos.

(esquecemos de tirar foto)

A prova da catalase dando positiva indica que a bactéria é do grupo Staphylococcus. Dessa forma, seguimos para o teste da coagulase para identificação das espécies.

# data[].attributes.attachment_caption
Essa prova tem como finalidade identificar se o microorganismo é capaz de converter fibrinogênio em fibrina. A formação de um coágulo é positivo e a não formação do coágulo mostra que o teste foi negativo.

# data[].attributes.body
O resultado obtido foi positivo para Coagulase. A possível bactéria pode ser o S. aureus.

Para comprovar que é o S. aureus, faremos a semeadura da amostra em ágar sal manitol.

# data[].attributes.body
O meio de cultura sal manitol é seletivo e diferencial utilizado para identificar e isolar estafilococos como o Staphylococcus aureus. Além disso, por conta do indicador de pH vermelho de fenol, a fermentação do manitol pela S. aureus altera o pH da placa produzindo uma coloração amarelada.

Quando o resultado é negativo a placa fica com uma coloração rosa/avermelhada.

(esquecemos de tirar foto)

# data[].attributes.body
Percebe-se uma coloração do ágar um tom "amarelo claro", dessa forma "manitol positivo". Ao observarmos a placa, é visível a formação das colônias e uma coloração amarelada, consequentemente houve crescimento bacteriano e fermentação do manitol (produção de ácidos pelas bactérias mudando a cor do ágar).

Conclusão: com esse resultado e com os resultados anteriores, presença de staphylococcus aureus.

# data[].attributes.body
Para esse teste foi usado o cristal de violeta, por 1 mim, lugol, por 1 mim e a fluoxina por 30 segs. Na sequencia foi feita a lavagem da lamina para posterior secagem e análise em microscópio.

# data[].attributes.attachment_caption
Na Coloração de Gram, as bactérias gram-positivas ficam roxas/azuis enquanto as bactérias gram-negativas ficam com coloração rosa/vermelho.

# data[].attributes.body
A lâmina permitiu identificar os cocos em cachos característicos do grupo Staphylococcus além da coloração azul, evidenciando uma bactéria gram-positiva.

O resultado corrobora com o achado nos testes anteriores.

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Resultado do Teste de Tolerância ao Sal 6,5% NaCl

# data[].attributes.subject
Resultado do Teste de Tolerância ao Sal 6,5% NaCl

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Observa-se um meio turvo dando resultado positivo. Isso ocorre devido ao crescimento bacteriano, neste caso como o caldo tem uma grande quantidade de sal ele é seletivo para as bactérias do grupo Enterococcos.

# data[].attributes.body
Para esse teste foi usado o cristal de violeta, por 1 mim, lugol, por 1 mim e a fluoxina por 30 segs. Na sequencia foi feita a lavagem da lamina para posterior secagem e análise em microscópio.

# data[].attributes.body
Observa-se cocos mais aos pares e em cadeia, característicos de bactérias gram-positivas. (enterococcus ou streptococcus)

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Amostra de urina contaminada com bactéria desconhecida

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Amostra de urina contaminada com bactéria desconhecida

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Amostra de fezes para realização de coprocultura

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Amostra de fezes para realização de coprocultura

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Amostra de urina contaminada com bactéria desconhecida

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Amostra de urina contaminada com bactéria desconhecida

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A placa de ágar mcConkey fornece um meio seletivo para crescimento de bactérias gram-negativas. A seletividade é alcançada por conter sais biliares e violeta de cristal, que inibem bactérias Gram-positivas. A diferenciação se dá pela capacidade das bactérias de fermentar a lactose, que é indicada pela mudança de cor do indicador de pH (vermelho neutro) para rosa nas colônias que a fermentam enquanto as colônias não fermentadoras ficam amarelas.

# data[].attributes.body
É diferencial e não seletivo, usado para o isolamento, contagem e identificação de bactérias, principalmente da urina. Ele suporta o crescimento de patógenos urinários, mas inibe cepas de Proteus devido à falta de eletrólitos, e usa o azul de bromotimol para diferenciar colônias que fermentam a lactose (amarelas) das que não fermentam (azuis).

# data[].attributes.body
Meio Seletivo e diferencial utilizado para isolar gram-negativas.

Seletivo: Os corantes eosina e azul de metileno inibem o crescimento de bactérias Gram-positivas, favorecendo o crescimento de bactérias Gram-negativas, como os bacilos entéricos.

Diferencial: meio contém lactose e sacarose como fontes de carbono.

Colônias coloridas: As bactérias que fermentam a lactose (como a E. coli) produzem ácidos e o pH do meio diminui, resultando na coloração azul-escura ou esverdeada brilhante ou rosa.

Colônias incolores: As bactérias que não fermentam a lactose produzem colônias incolores.

# data[].attributes.body
A placa de ágar mcConkey fornece um meio seletivo para crescimento de bactérias gram-negativas. A seletividade é alcançada por conter sais biliares e violeta de cristal, que inibem bactérias Gram-positivas. A diferenciação se dá pela capacidade das bactérias de fermentar a lactose, que é indicada pela mudança de cor do indicador de pH (vermelho neutro) para rosa nas colônias que a fermentam enquanto as colônias não fermentadoras ficam amarelas.

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É diferencial e não seletivo, usado para o isolamento, contagem e identificação de bactérias, principalmente da urina. Ele suporta o crescimento de patógenos urinários, mas inibe cepas de Proteus devido à falta de eletrólitos, e usa o azul de bromotimol para diferenciar colônias que fermentam a lactose (amarelas) das que não fermentam (azuis).

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Meio Seletivo e diferencial utilizado para isolar gram-negativas.

Seletivo: Os corantes eosina e azul de metileno inibem o crescimento de bactérias Gram-positivas, favorecendo o crescimento de bactérias Gram-negativas, como os bacilos entéricos.

Diferencial: meio contém lactose e sacarose como fontes de carbono.

Colônias coloridas: As bactérias que fermentam a lactose (como a E. coli) produzem ácidos e o pH do meio diminui, resultando na coloração azul-escura ou esverdeada brilhante.

Colônias incolores: As bactérias que não fermentam a lactose produzem colônias incolores.

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A placa de ágar mcConkey fornece um meio seletivo para crescimento de bactérias gram-negativas. A seletividade é alcançada por conter sais biliares e violeta de cristal, que inibem bactérias Gram-positivas. A diferenciação se dá pela capacidade das bactérias de fermentar a lactose, que é indicada pela mudança de cor do indicador de pH (vermelho neutro) para rosa nas colônias que a fermentam enquanto as colônias não fermentadoras ficam amarelas.

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Meio Seletivo e diferencial utilizado para isolar gram-negativas.

Seletivo: Os corantes eosina e azul de metileno inibem o crescimento de bactérias Gram-positivas, favorecendo o crescimento de bactérias Gram-negativas, como os bacilos entéricos.

Diferencial: meio contém lactose e sacarose como fontes de carbono.

Colônias coloridas: As bactérias que fermentam a lactose (como a E. coli) produzem ácidos e o pH do meio diminui, resultando na coloração azul-escura ou esverdeada brilhante.

Colônias incolores: As bactérias que não fermentam a lactose produzem colônias incolores.

# data[].attributes.body
Meio de cultura seletivo e diferencial usado para isolar bactérias gram-negativas entéricas.

Seletividade: Os sais biliares presentes no meio inibem o crescimento da maioria das bactérias Gram-positivas, favorecendo o desenvolvimento de bactérias Gram-negativas.

Diferenciação: O ágar HE contém lactose, sacarose e salicina como carboidratos fermentáveis.

Fermentadores de carboidratos: Produzem ácidos, que mudam o pH e fazem as colônias aparecerem amarelas/laranjas.

Não fermentadores de carboidratos: Manteêm o pH original e as colônias aparecem verdes ou transparentes.

Produção de Sulfeto de Hidrogênio (H₂S): O citrato de ferro(III) e o tiossulfato de sódio reagem para produzir H₂S.

Bactérias que produzem H₂S formam colônias com centros pretos ou completamente pretas.

# data[].attributes.body
Meio seletivo e diferencial utilizado para isolar e identificar bactérias dos gêneros Salmonella e Shigella. Sua composição, que inclui sais biliares, verde brilhante e citrato de sódio, inibe o crescimento da maioria das bactérias Gram-positivas e coliformes, permitindo o desenvolvimento das bactérias de interesse.

Cor da colônia: As bactérias que não fermentam a lactose, como Salmonella e Shigella, produzem colônias incolores. As que produzem lactose ficam vermelhas.

Produção de H2S: A inclusão de citrato férrico e tiossulfato de sódio permite identificar as bactérias que produzem sulfeto de hidrogênio (H₂S). Estas produzem colônias com um centro preto

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O teste detecta a presença da enzima citocromo c oxidase em bactérias, que é essencial na cadeia de transporte de elétrons da respiração celular. 



Um resultado positivo é indicado por uma mudança de cor para roxo ou azul, revela organismos como Pseudomonas, Neisseria e Moraxella.



Um resultado negativo não altera a cor do reagente.

# data[].attributes.body
O teste da oxidase foi negativo. Isso indica que a bactéria provavelmente pertence a família Enterobacteriaceae.

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O teste detecta a presença da enzima citocromo c oxidase em bactérias, que é essencial na cadeia de transporte de elétrons da respiração celular. 



Um resultado positivo é indicado por uma mudança de cor para roxo ou azul, revela organismos como Pseudomonas, Neisseria e Moraxella.



Um resultado negativo não altera a cor do reagente.

# data[].attributes.body
O teste da oxidase foi negativo. Isso indica que a bactéria provavelmente pertence a família Enterobacteriaceae.

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O teste detecta a presença da enzima citocromo c oxidase em bactérias, que é essencial na cadeia de transporte de elétrons da respiração celular. 



Um resultado positivo é indicado por uma mudança de cor para roxo ou azul, revela organismos como Pseudomonas, Neisseria e Moraxella.



Um resultado negativo não altera a cor do reagente.

# data[].attributes.body
O teste da oxidase foi negativo. Isso indica que a bactéria provavelmente pertence a família Enterobacteriaceae.

# data[].attributes.body
O crescimento bacteriano na placa indica que são bactérias gram-negativas.

A cor vermelha/rosa do ágar indica que a bactéria fermenta lactose.

# data[].attributes.body
A coloração amarelada do ágar indica que a bactéria é fermentadora de lactose

# data[].attributes.body
O crescimento bacteriano indica que a bactéria é gram-negativa.

A coloração rosada das colônias indica que a bactéria é fermentadora de lactose.

Resultado esse que corrobora com as placas de ágar mcConkey e CLED.

# data[].attributes.body
O crescimento bacteriano indica que a bactéria é gram-negativa.

A coloração amarelada/alaranjada da placa indica que a bactéria não fermenta lactose.

# data[].attributes.body
A coloração esverdeada/azul do ágar indica que a bactéria não fermenta lactose.

Resultado esse que corrobora com a placa de mcConkey.

# data[].attributes.body
Não houve crescimento bacteriano na placa. Os prováveis motivos estão relacionados a problemas no ágar (data de validade expirada).

# data[].attributes.body
Houve crescimento bacteriano, confirmando ser um bacilo gram-negativo, porém não fermentou lactose (coloração amarelada).

# data[].attributes.body
O Ágar Citrato de Simmons é um meio de cultura diferencial usado para identificar bactérias ,principalmente Enterobactérias, pela sua capacidade de usar citrato como única fonte de carbono.

O meio contém citrato de sódio (carbono), sais de amônio (nitrogênio) e o indicador de pH azul de bromotimol (verde).

O resultado positivo surge quando a bactéria utiliza o citrato, produzindo subprodutos alcalinos que aumentam o pH. O meio muda de cor de verde para azul.

Caso a bactéria não utilize o citrato, não há crescimento e o meio permanece verde.

É um teste essencial para diferenciar bacilos Gram-negativos, como na distinção entre E. coli (negativa) e Klebsiella/Enterobacter (positivas).

# data[].attributes.body
O Meio de Rugai é um meio projetado para a identificação presuntiva de Enterobactérias em um único tubo. Sua principal característica é a capacidade de avaliar múltiplas reações bioquímicas simultaneamente, como fermentação de açúcares (glicose e sacarose), motilidade, produção de gás H2S, hidrólise da ureia, e reações de Lisina e Indol.

O resultado positivo é indicado por mudanças de cor ou crescimento diferenciado: cor amarela (fermentação de açúcares), cor negra (produção de H2S, cor azul (urease positiva), turvação difusa (motilidade), ou cor púrpura na base (Lisina positiva). O resultado negativo é, geralmente, permanencia cor original do meio (azul-esverdeada) e o crescimento restrito à linha de inoculação.

Ele é utilizado para a triagem rápida de colônias isoladas, embora não forneça a identificação final e precisa da espécie bacteriana.

# data[].attributes.body
O Meio LMI (Lisina Motilidade Indol) é um meio semissólido para a identificação presuntiva de Enterobactérias, combinando três testes em um só tubo.

É muito usado para a triagem rápida de colônias puras de bacilos Gram-negativos.

Possibilita a identificação de motilidade onde quado positivo o crescimento é difuso (turvação) e negativo o crescimento é restrito à picada.

Possibilita a identificação da descarboxilação da lisina: positivo a cor é púrpura (lisina descarboxilada) e quando negativo a cor é amarela (lisina não utilizada).

Possibilita a identificação da produção de indol onde adiciona-se o Reagente de Kovacs após a incubação. O resultado positivo é indicado pela formação de um anel de cor rosa ou vermelha na superfície, indicando a produção de indol a partir do triptofano e o resultado negativo é a cor inalterada do reativo ,amarela.

# data[].attributes.body
O Meio MIO (Motilidade Indol Ornitina) é um meio de cultura semissólido, diferencial e multifuncional, utilizado para a identificação presuntiva de Enterobactérias (bacilos Gram-negativos). Sua principal característica é a realização simultânea de três testes bioquímicos essenciais para a diferenciação bacteriana em um único tubo: Motilidade, Produção de Indol e Descarboxilação da Ornitina.

O meio virgem possui uma cor púrpura-lilás (devido ao indicador de pH púrpura de bromocresol).

Para motilidade o resultado positivo é indicado pelo crescimento difuso do microrganismo, que se espalha para fora da linha de picada, turvando o meio. O resultado negativo é apontado quando o crescimento é restrito apenas à linha de inoculação, deixando o meio transparente.

Na descarboxilação de ornitinas a bactéria primeiro fermenta a dextrose do meio, que o acidifica e o torna amarelo . Se a bactéria produzir a enzima ornitina descarboxilase, ela quebra o aminoácido ornitina, liberando uma amina (putrescina) que alcaliniza o meio, fazendo-o retornar à cor púrpura/lilás ,positivo. Se não houver descarboxilação, a cor amarela persiste.

Para o texte de indol adiciona-se o Reativo de Kovacs após a incubação. O resultado positivo é indicado pela formação de um anel de cor rosa ou vermelha na superfície, indicando a produção de indol a partir do triptofano e o resultado negativo é a cor inalterada do reativo ,amarela.

# data[].attributes.body
Ramnose é um meio de cultura líquido, de cor púrpura em sua forma virgem, utilizado para um teste bioquímico específico: a fermentação do carboidrato ramnose. A principal característica deste meio é ser um caldo de fermentação que contém ramnose como única fonte de carboidrato e o indicador de pH púrpura de bromocresol.

É empregado na diferenciação e identificação de microrganismos, principalmente a ordem Enterobacterales e, notavelmente, a bactéria Listeria monocytogenes. O teste é crucial porque a capacidade de fermentar a ramnose varia entre espécies, auxiliando na distinção dentro de grupos bacterianos.

A fermentação da ramnose pela bactéria produz ácidos orgânicos, o que abaixa o pH do meio. A mudança de pH é detectada pelo indicador, resultando na viragem da cor púrpura para amarela.

Quando o microrganismo é incapaz de fermentar a ramnose, e o meio mantém sua cor original púrpura.

# data[].attributes.body
O Caldo VM/VP (Vermelho de Metila e Voges-Proskauer) é um meio de cultura líquido, transparente ou de coloração âmbar/amarelo pálido quando virgem, utilizado na microbiologia para diferenciar bacilos Gram-negativos da família Enterobacteriaceae. Sua principal característica é a avaliação da via fermentativa da glicose utilizada pela bactéria.

O meio contém glicose, peptona e um tampão fosfato. O caldo inoculado é incubado e, posteriormente, dividido em dois tubos para a realização dos testes do Vermelho de Metila (VM) e Voges-Proskauer (VP).

Teste do Vermelho de Metila (VM): Este teste avalia a capacidade do microrganismo de produzir e manter altos níveis de ácidos estáveis (como ácido láctico, acético e fórmico) após a fermentação da glicose. Adiciona-se o indicador Vermelho de Metila.

VM Positivo: O meio fica com coloração vermelha

VM Negativo: O meio fica amarelo ou acastanhado

Teste de Voges-Proskauer (VP): Este teste detecta a presença de acetoína (acetilmetilcarbinol), um produto intermediário da via de fermentação da glicose conhecida como via butilenoglicólica. Adicionam-se os reagentes de Barritt (alfa-naftol e hidróxido de potássio).

VP Positivo: Ocorre o desenvolvimento de uma coloração vermelha-rósea (ou vinho) na superfície do meio, indicando a presença de acetoína.

VP Negativo: A coloração permanece amarela ou inalterada/acastanhada.

Geralmente, há uma relação inversa entre os resultados de VM e VP: organismos VM Positivos tendem a ser VP Negativos, e vice-versa.

# data[].attributes.body
O Ágar Fenilalanina é um meio de cultura sólido inclinado em rampa, que tem uma coloração amarelo pálido/translúcida em seu estado virgem. A principal característica deste meio é que ele contém o aminoácido fenilalanina.

É usado na identificação e diferenciação de bactérias da família Enterobacteriaceae, testando a capacidade do microrganismo de produzir a enzima fenilalanina desaminase. Esta enzima é característica de gêneros como Proteus, Providencia e Morganella, e sua detecção ajuda a diferenciar estes grupos de outras Enterobactérias.

O resultado positivo ocorre se a bactéria produzir a enzima fenilalanina desaminase, que remove o grupo amina da fenilalanina, gerando ácido fenilpirúvico. Este ácido reage com o cloreto férrico, resultando na formação de uma coloração verde musgo brilhante.

Se a bactéria não produzir a enzima, o meio não sofre alteração de cor após a adição do cloreto férrico. O meio permanece com a cor amarelada/translúcida que é a cor do reagente.

# data[].attributes.body
Um resultado positivo é observado pela mudança da cor do meio de verde para azul. A amostra A1 apresentou resultado negativo (-), indicando que não utiliza o citrato como única fonte de carbono.

# data[].attributes.body
Desaminação do L-Triptofano (TRI): O resultado esperado para um teste positivo seria o desenvolvimento de uma coloração verde garrafa no ápice do tubo. A amostra A1 apresentou resultado negativo (-), indicando que a bactéria não possui a enzima triptofano desaminase.

Fermentação da Glicose: Uma reação positiva para a fermentação da glicose é observada pela mudança da cor do meio para amarelo na base do tubo. A amostra A1 obteve resultado positivo (+), o que confirma sua capacidade de fermentar a glicose.

Produção de Gás a partir da Glicose: A presença de bolhas ou rachaduras no meio de cultura indica a produção de gás. A amostra A1 mostrou um resultado positivo (+), demonstrando que a fermentação da glicose foi acompanhada pela produção de gás.

Produção de H₂S (Sulfeto de Hidrogênio): Um resultado positivo é caracterizado pelo enegrecimento do meio na base do tubo. A amostra A1 teve um resultado negativo (-), o que significa que não houve produção de H₂S.

Hidrólise de Ureia: Para este teste, a mudança de cor para azul na base do tubo sinalizaria um resultado positivo. O resultado negativo (-) da amostra A1 indica que a bactéria não possui a enzima urease.

# data[].attributes.body
O resultado positivo é a cor púrpura em todo o tubo. A amostra A1 apresentou resultado positivo(+), indicando que houve descarboxilação da lisina.

# data[].attributes.body
A cor púrpura em todo o tubo também é o indicativo de um resultado positivo para este teste. A amostra A1 obteve resultado positivo (+), mostrando que a bactéria possui a enzima ornitina descarboxilase.

A turvação do meio, que se espalha para além da linha de inoculação, indica motilidade bacteriana. O resultado positivo (+) confirma que a bactéria é móvel.

A formação de um anel vermelho no ápice do tubo após a adição de um reativo (Kovacs) é esperada para um resultado positivo. A amostra A1 apresentou resultado positivo (+) para a produção de indol.

# data[].attributes.body
A viragem da cor do meio para amarelo indica uma reação positiva. A amostra A1 teve um resultado positivo (+), mostrando que a bactéria fermenta a ramnose.

# data[].attributes.body
A cor verde garrafa no ápice do meio após a adição de um reagente (cloreto férrico) indicaria um resultado positivo. O resultado negativo (-) da amostra A1 mostra a ausência da enzima fenilalanina

# data[].attributes.body
Neste teste, a cor vermelha no tubo inteiro após a adição do indicador é um resultado positivo. A amostra A1 foi positiva (+), indicando a produção de ácidos estáveis pela via da fermentação ácida mista.

# data[].attributes.body
Por meio da interpretação dos resulatados encontrados e da analise da tabela de interpretação de resultados do kit de enterobacterias da LABORCLIN, foi possivel chegar a conclusão que o código da bacteria da amostra é 3991, onde temos 3 possibilidades de diagnostico: E. coli ,E. aerogenes e S. liquefaciens, sendo a E. coli a opção mais provável.

# data[].attributes.body
Descarboxilação da lisina: O resultado é positivo quando há a cor púrpura em todo o tubo. Portanto, a amostra 2, o resultado é negativo, indicando que não houve descarboxilação da lisina.

Indol: O resultado é positivo quando aparece um "anel" de coloração vermelha ou rosada na parte superior do tubo. A amostra 2 não apresentou essa característica. Portanto, resultado negativo, indicando que a bactéria não tem a capacidade de produzir indol.

# data[].attributes.body
Desaminação do L-Triptofano (TRI):

A amostra 2 apresentou o desenvolvimento da coloração verde garrafa no ápice do tubo. Sendo assim, o resultado é positivo, indicando que a bactéria possui a enzima triptofano desaminase.

Fermentação da Glicose:

A fermentação de glicose na amostra 2 encontra-se mascarada. No entanto, houve crescimento, uma vez que a cor do meio se alterou. Caso não tivesse crescimento, o meio ficaria da cor inalterada, ou seja, na cor verde. Portanto, o resultado positivo, confirmando a capacidade da bactéria de fermentar a glicose.

Produção de gás:

A amostra 2 formou-se bolhas no meio de cultura, indicando a produção de gás pela bactéria. Portanto, resultado é positivo.

Produção de H₂S:

A amostra 2 apresentou enegrecimento do meio na base do tubo. Portanto, resultado positivo, indicando que houve produção de H₂S.

Hidrólise de ureia:

A amostra 2 apresentou na base do tubo uma coloração mais escura, indicando que a bactéria possui a enzima urease. Portanto, resultado positivo.

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Não houve mudança de cor do meio para amarelo. Portanto, a amostra 2 o resultado é negativo, indicando que a bactéria não fermenta a ramnose.

# data[].attributes.body
Na amostra 2, houve mudança de cor do meio do verde para o azul, indicando que a bactéria utiliza o citrato como fonte de carbono. Portanto, resultado positivo.

# data[].attributes.body
Na amostra 2, a cor verde garrafa no ápice do meio indica presença da enzima fenilalanina. Portanto, resultado positivo.

# data[].attributes.body
Na amostra 2, após adição do indicador, o meio apresentou cor vermelha, indicando produção de ácidos estáveis pela via de fermentação ácida mista. Portanto, resultado positivo.

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Descarboxilação da Ornitina: Apesar da amostra 2 apresentar uma coloração do meio diferente, o meio não estava amarelo. Portanto, resultado positivo, indicando que a bactéria possui a enzima ornitina descarboxilase.

Motilidade: A turvação do meio da amostra 2, além da linha de inoculação, indica que a bactéria é móvel. Portanto, resultado positivo.

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O ágar EMB não estava em condições adequadas para ser analisado.

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Houve crescimento bacteriano, confirmando bacilos gram-negativos, porém não houve fermentação de lactose (meio ficou verde). Produz H2S (colônias pretas).

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Houve crescimento bacteriano, com produção de H2S (colônias pretas).

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De acordo com todos os testes realizados e com os seus devidos resultados, o diagnostico final é: Enterococcus spp.

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Por meio dos resultados encontrados nos testes executados nas aulas práticas e por meio da análise da tabela de interpretação de resultados do kit de enterobactérias da LABORCLIN, chegou-se a conclusão que o código da bactéria da amostra 2 é 6843, onde temos duas possibilidades de diagnóstico: P. mirabilis e E. coli, sendo P. mirabilis a mais provável.

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Desaminação do L-Triptofano:

Na amostra 3 não apresentou uma coloração de um verde garrafa, neste caso resultado negativo.

Fermentação de Glicose:

A fermentação de glicose na amostra 3 encontra-se mascarada. No entanto, houve crescimento, uma vez que a cor do meio se alterou. Caso não tivesse crescimento, o meio ficaria da cor inalterada, ou seja, na cor verde. Portanto, o resultado positivo, confirmando a capacidade da bactéria de fermentar a glicose.

Produção de gás:

A amostra 3 formou-se bolhas no meio de cultura (com uma coloração até amarelada) indicando a produção de gás pela bactéria. Portanto, resultado é positivo.

Produção de H₂S:

A amostra 3 apresentou enegrecimento do meio na base do tubo. Portanto, resultado positivo, indicando que houve produção de H₂S.

Hidrólise de ureia:

A amostra 3 não apresentou uma mudança de coloração no fundo do tubo, indicando que a bactéria não possui a enzima urease. Portanto, resultado negativo.

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Descarboxilação da lisina: O resultado é positivo quando há a cor púrpura em todo o tubo. Portanto, a amostra 3, o resultado é positivo, indicando que houve descarboxilação da lisina.

Indol: O resultado é positivo quando aparece um "anel" de coloração vermelha ou rosada na parte superior do tubo. A amostra 3 não apresentou essa característica. Portanto, resultado negativo, indicando que a bactéria não tem a capacidade de produzir indol.

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Houve mudança de cor do meio para amarelo. Portanto, a amostra 3 o resultado é positivo, indicando que a bactéria fermenta a ramnose.

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Na amostra 3, houve mudança de cor do meio do verde para o azul, indicando que a bactéria utiliza o citrato como fonte de carbono. Portanto, resultado positivo.

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Na amostra 3, não formou a cor verde garrafa no ápice do meio, logo indica a falta da enzima fenilalanina. Portanto, resultado negativo.

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Na amostra 3, após adição do indicador, o meio apresentou cor vermelha, indicando produção de ácidos estáveis pela via de fermentação ácida mista. Portanto, resultado positivo.

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Descarboxilação da Ornitina:

Coloração da amostra 3 (púrpura). Portanto, resultado positivo, indicando que a bactéria possui a enzima ornitina descarboxilase.

Motilidade: A turvação do meio da amostra 3, além da linha de inoculação, indica que a bactéria é móvel. Portanto, resultado positivo.

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Por meio dos resultados encontrados nos testes executados nas aulas práticas e por meio da análise da tabela de interpretação de resultados do kit de enterobactérias da LABORCLIN, chegou-se a conclusão que o código da bactéria da amostra 3 é 1944, onde temos um provável diagnóstico: S. enteritidis.

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Com base nos testes realizados e nos resultados obtidos, a provável bactéria é o Staphylococcus aureus.