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Sustancias de interés en el laboratorio: drogas terapéuticas y de abuso. 

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Sustancias de interés en el laboratorio: drogas terapéuticas y de abuso. 

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1. Drogas terapéuticas (TDM: Therapeutic Drug Monitoring)

Antiepilépticos: fenitoína, valproato, carbamazepina.

Antidepresivos tricíclicos: amitriptilina, nortriptilina.

Inmunosupresores: ciclosporina, tacrolimus.

Antibióticos específicos: vancomicina, gentamicina.

Antipsicóticos y litio.

2. Drogas de abuso (screening y confirmación)

Alcohol (etanol).

Cannabis (THC).

Cocaína y metabolitos.

Opiáceos (morfina, heroína).

Benzodiacepinas.

Anfetaminas y metanfetaminas.

Alucinógenos (LSD, fenciclidina).

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Métodos analíticos: utilizados en cribado y monitoreo.

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Métodos analíticos: utilizados en cribado y monitoreo.

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🔹 Cribado (Screening – rápido y sensible):

Inmunoensayos (EIA, EMIT, FPIA, ELISA):

Alta sensibilidad.

Detección cualitativa o semi-cuantitativa.

Bajo costo.

Alta probabilidad de falsos positivos → requiere confirmación.

🔹 Confirmación (alta especificidad y cuantificación):

Cromatografía acoplada a espectrometría de masas (GC-MS, LC-MS/MS):

Gold standard.

Cuantificación exacta.

Alta especificidad y sensibilidad.

Costo y tiempo mayor.

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Principales consideraciones preanalíticas en el estudio de drogas terapéuticas y de abuso.

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Principales consideraciones preanalíticas en el estudio de drogas terapéuticas y de abuso.

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Tipo de muestra adecuada: suero, plasma, orina, saliva, sangre entera, cabello.

Momento de la toma: crucial para TDM (nivel valle o pico).

Condiciones de conservación: algunas drogas se degradan rápido (ej. cocaína).

Evitar contaminación de la muestra.

Identificación correcta del paciente.

Evitar hemólisis o lipemia (interfieren en inmunoensayos).

Documentación adecuada: sospecha clínica, tiempo desde exposición.

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PROCEDIMIENTOS DE LAS TÉCNICAS UTILIZADAS

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PROCEDIMIENTOS DE LAS TÉCNICAS UTILIZADAS

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1. EMIT (Enzyme Multiplied Immunoassay

Technique)

﻿﻿Principio:

﻿﻿Basado en inhibición enzimática competitiva.

﻿﻿La droga en la muestra compite con la droga marcada con una enzima (ej.glucosa-6-fosfato deshidrogenasa, G6PDH) por los anticuerpos específicos.

﻿﻿Si la droga está presente en la muestra, desplaza a la droga-enzima, permitiendo que esta última actúe sobre su sustrato y genere un cambio detectable (ej. absorbancia).

﻿﻿La señal es inversamente proporcional a la concentración de la droga.

﻿﻿Ventajas:

﻿﻿Rápido (resultados en minutos).

﻿﻿Automatizable (alto rendimiento).

﻿﻿Sensibilidad >90% para opiáceos, benzodiazepinas y cannabinoides [2].

﻿﻿Limitaciones:

﻿﻿Reacciones cruzadas (ej.

fluoroquinolonas pueden interferir en

tests de opiáceos).

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Función del laboratorio en la toxicología y su impacto a nivel clínico. 

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Función del laboratorio en la toxicología y su impacto a nivel clínico. 

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El laboratorio clínico tiene un rol fundamental en la identificación, cuantificación y monitoreo de sustancias tóxicas, tanto en contextos agudos (intoxicaciones) como crónicos (monitoreo terapéutico o detección de abuso de sustancias). Su impacto incluye:

Diagnóstico de intoxicaciones.

Evaluación de cumplimiento terapéutico.

Apoyo en emergencias clínicas.

Apoyo forense y legal.

Ajuste de dosis en tratamientos farmacológicos.

Detección de efectos adversos o interacción entre drogas.

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2. Cromatografía de Capa Fina (TLC)

﻿﻿Principio:

﻿﻿Separación basada en polaridad y afinidad:

1. ﻿﻿﻿La muestra se aplica sobre una placa de sílica gel (fase estacionaria).

2. ﻿﻿﻿Se sumerge en un solvente (fase móvil) que migra por capilaridad.

3. ﻿﻿﻿Los compuestos se separan según su solubilidad en el solvente y adherencia a la sílica.

4. ﻿﻿﻿Se visualizan con reactivos (ej. ninhidrina para aminoácidos, UV para drogas fluorescentes).

﻿﻿Ventajas:

﻿﻿Bajo costo (equipos simples).

﻿﻿Útil para screening cualitativo de múltiples muestras simultáneamente.

Ventajas:

﻿﻿Bajo costo (equipos simples).

﻿﻿Útil para screening cualitativo de múltiples muestras simultáneamente.

﻿﻿Limitaciones：

﻿﻿Baja sensibilidad (detección en ug/mL, vs. ng/mL de LC-MS/MS).

﻿﻿Subjetividad en la interpretación visual
[3].

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3. Cromatografía Líquida-Espectrometría de Masas (LC-MS/MS)

﻿﻿Principio:

﻿﻿Fase líquida: La muestra se separa mediante una columna cromatográfica
(fase estacionaria) usando un disolvente (fase móvil).

﻿﻿lonización: Las moléculas se ionizan (ej. electrospray, ESI) para convertirse en iones cargados.

﻿﻿Detección masas: Un espectrómetro de masas mide la relación masa/carga (*m/z*) de los iones, permitiendo identificación y cuantificación precisa.

﻿﻿Modo tándem (MS/MS): Un primer cuadrupolo selecciona el ion precursor, un segundo lo fragmenta, y un tercero analiza los fragmentos para mayor especificidad.

﻿﻿Ventajas:

﻿﻿Alta sensibilidad (detecta ng/mL o pg/
mL).

﻿﻿Capacidad para analizar múltiples drogas simultáneamente (multianálisis).

﻿﻿Ideal para moléculas no volátiles o termolábiles (ej. antidepresivos, antirretrovirales) [4].

﻿﻿Limitaciones:

﻿﻿Costo elevado y requerimiento de personal especializado.

﻿﻿Efecto matriz (interferencias por componentes de la muestra) [5].

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4. Cromatografía de Gases-Espectrometría de Masas (GC-MS)

﻿﻿Principio:

﻿﻿Volatilización: La muestra se vaporiza en un inyector a alta temperatura (200-
300°С).

﻿﻿Separación: Los compuestos se separan en una columna capilar según su polaridad y punto de ebullición.

﻿﻿lonización: Los eluatos se ionizan (ej. impacto electrónico, El) y fragmentan.

﻿﻿Detección: El espectrómetro mide m/ z y compara con bases de datos de espectros (ej. NIST).

Ventajas:

﻿﻿Alta resolución para compuestos volátiles (ej. THC, éxtasis).

﻿﻿Bajo límite de detección (LOD ~ 0.1 ng/ mL).

﻿﻿Limitaciones:

﻿﻿Requiere derivatización para drogas polares (ej. benzoylecgonina).

﻿﻿No apto para moléculas grandes o termolábiles [6].

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5. ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent

Assay)

﻿﻿Principio:

﻿﻿Inmunoensayo competitivo o sandwhich:

﻿﻿Anticuerpos específicos inmovilizados en un pocillo capturan el antígeno (droga).

﻿﻿Un segundo anticuerpo marcado con enzima (ej. peroxidasa) genera señal (colorimétrica/fluorescente).

﻿﻿La intensidad de la señal es proporcional/inversa a la concentración de la droga.

﻿﻿Ventajas:

﻿﻿Alto rendimiento (96 pocillos/placa).

﻿﻿Sensibilidad moderada (ng/mL).

﻿﻿Limitaciones:

﻿﻿Falsos positivos por reacciones cruzadas (ej. opiáceos y ciertos alimentos)

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Otros biomarcadores (Indirectos) para el monitoreo de drogas terapéuticas y de abuso. 

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Otros biomarcadores (Indirectos) para el monitoreo de drogas terapéuticas y de abuso. 

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Se usan cuando no se puede medir directamente la droga o para evaluar daño fisiológico:

Transaminasas (AST, ALT): hepatotoxicidad por drogas o alcohol.

Creatinina y BUN: nefrotoxicidad.

GGT, AST/ALT: uso crónico de alcohol.

Amilasa/lipasa: pancreatitis inducida por sustancias.

CK (CPK): rabdomiolisis por uso de cocaína, estatinas, etc.

Electrolitos (Na, K, Mg): alteraciones inducidas por tóxicos.

pH, bicarbonato, anión gap: acidosis metabólica (sobredosis de salicilatos, metanol, etilenglicol).

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1. Biomarcadores de Daño Hepático

a. Transaminasas (AST, ALT)

﻿﻿Función:

﻿﻿AST (Aspartato Aminotransferasa):
Marcador de daño hepático y muscular (elevado en alcoholismo crónico).

﻿﻿ALT (Alanina Aminotransferasa): Más especifico de hepatotoxicidad (ej.
paracetamol, alcohol).

﻿﻿Uso clínico:

﻿﻿Niveles >3x el límite superior indican hepatotoxicidad por drogas (ej.

antiinflamatorios).

﻿﻿Ratio AST/ALT >2 sugiere alcoholismo crónico.

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b. GGT (Gamma-Glutamil Transferasa)

﻿﻿Función:

﻿﻿Sensible a daño por alcohol o drogas hepatotóxicas (ej. antiepilépticos).

﻿﻿Uso clínico:

﻿﻿Elevada en consumo crónico de alcohol

(junto con CDT).

Propuesta visual:

diferentes escenarios:

﻿﻿Normal vs. hepatitis tóxica vs.

alcoholismo.

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2. Biomarcadores de Daño Renal

a. Creatinina y BUN (Nitrógeno Ureico en

Sangre)

﻿﻿Función:

﻿﻿Creatinina: Filtración glomerular (elevada en nefrotoxicidad por AlNEs,
aminoglucósidos).

﻿﻿BUN: Puede elevarse por deshidratación o daño renal.

﻿﻿Uso clínico:

﻿﻿Ratio BUN/creatinina >20 sugiere daño prerrenal (ej. sobredosis de diuréticos).

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3. Biomarcadores de Pancreatitis

a. Amilasa y Lipasa

﻿﻿Función:

﻿﻿Amilasa: Elevada en pancreatitis aguda (inducida por alcohol o drogas como
azatioprina).

﻿﻿Lipasa: Más específica y duradera (48-
72 h).

﻿﻿Uso clínico:

﻿﻿Lipasa >3x el límite superior confirma pancreatitis.

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1.Edu.hn. [citado el 6 de abril de 2025]. Disponible en: https://campusvirtual.unah.edu.hn/pluginfile.php/880044/mod_resource/content/1/R19.%20Art%C3%ADculo%20%E2%80%93%20Huarte.%20El%20laboratorio%20de%20toxicolog%C3%ADa%20%281%29.pdf

2. Cabrera-Cruz H, Reyes JD, Alvarenga M del R. Detección de Macroprolactina en pacientes con Hiperprolactemia de un Hospital del tercer nivel en atención en Tegucigalpa, Honduras. 2021 [citado el 6 de abril de 2025]; Disponible en: https://repositorio.csuca.org/88/

3. Laboratorio de Toxicologia [Internet]. Scribd. [citado el 6 de abril de 2025]. Disponible en: https://es.scribd.com/document/477122378/Laboratorio-de-Toxicologia