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Artículo: Las licencias Creative Commons: qué son, por qué utilizarlas y cómo hacerlo | Cedec

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Las licencias Creative Commons (CC) son un sistema muy sencillo que nos permite compartir nuestro material con otros usuarios sin necesidad de que tengan que solicitar permiso ni pagar por ello. De la misma forma, podremos utilizar materiales ajenos licenciados con CC libremente, siempre que cumplamos con los requisitos de la licencia. Vamos a conocer más sobre estas licencias.

Todos los materiales literarios, artísticos o científicos tienen, desde el mismo momento de su creación, derechos de autor. Esto quiere decir que solo el autor de la obra puede explotarla (distribuirla, modificarla, publicarla, exponerla públicamente...) de forma exclusiva durante un plazo de tiempo. Si queremos hacer uso de esta obra durante ese periodo de tiempo, debemos tener la autorización expresa del autor. Pasado ese plazo, la obra pasaría a Dominio Público y podría ser usada libremente, siempre que se respete la autoría y la integridad de la obra.

Pero, ¿qué ocurre durante este periodo de tiempo de exclusividad? ¿Puedo yo como autor o autora de una obra ponerla a disposición de los demás de una forma general sin tener que estar dando permiso a todos cuantos me lo soliciten y respetando la Ley de Propiedad Intelectual? Sí, a través de una licencia abierta.
Las licencias abiertas permiten que, durante ese plazo de tiempo en el que el autor tiene la exclusividad de los derechos de explotación, otros usuarios puedan hacer uso de la obra en determinados casos y bajo determinadas condiciones determinadas por el autor, sin necesidad de solicitar permiso ni autorización.
Uno de los sistemas de licencias abiertas más conocidos es el de Creative Commons que, como vemos, no es una alternativa a los derechos de autor, sino que se apoya en esta legislación para fomentar el conocimiento abierto. El autor decide, por medio de la licencia concreta que utilice, qué derechos cede y bajo qué condiciones. En el sistema de licencias CC se definen 4 condiciones:

De la combinación de estas cuatro condiciones se generan las seis licencias que vemos en la siguiente infografía.

Como vemos, todas las licencias CC sin excepción incluyen la condición BY, esto es, exigen el reconocimiento del autor y la fuente.

En el siguiente vídeo podemos ver una explicación de las mismas.

CEDEC. Hay que ver... las licencias ( CC BY-SA)

Creative Commons también ofrece dos iconos más para las obras de Dominio Público. No son licencias como tal, sino simplemente una marca para identificar las obras de este tipo con una ligera diferencia:

Indica las obras que no están protegidas por derechos de autor (de explotación) por haber expirado el plazo de protección y que, por tanto, pertenecen al Dominio Público.

Es una marca que los autores de nuevas creaciones pueden otorgar a sus obras y que indica que renuncian a cualquier derecho sobre la misma, teniendo igual tratamiento que si se tratase de una obra en Dominio Público.

En ocasiones, cuando queremos compartir materiales con los demás y permitir que otros lo reutilicen, simplemente lo publicamos en redes y añadimos un "el que quiera puede utilizarlo". ¿Para qué? ¿Con cualquier fin? ¿Lo pueden modificar? ¿Queremos que nos nombren como autor o autora si lo reutilizan? El hecho de otorgar al material una licencia abierta facilita que podamos compartirlo indicando claramente las condiciones para su uso, de forma que los usuarios conozcan las limitaciones y los requisitos previamente.

Las licencias abiertas Creative Commons ofrecen asimismo un valor adicional. Además de tratarse de un sistema muy sencillo, gratuito, con base jurídica y reconocido internacionalmente, es uno de los más conocidos y utilizados para licenciar recursos digitales. Esto permite que los usuarios puedan reconocer de forma fácil e instantánea las condiciones de uso de un material sin tener que realizar consultar particulares. En el ámbito de los Recursos Educativos Abiertos (REA) esto es especialmente interesante puesto que a la hora de reutilizar un material que contenga elementos con diferentes licencias, nos facilitará conocer qué podemos hacer con esos materiales o qué otros podemos incorporar sin necesidad de tener que buscar información adicional sobre los derechos de uso de cada uno de ellos.

Existen todo tipo de materiales con licencias Creative Commons disponibles en la red, desde elementos multimedia o textos hasta secuencias didácticas completas.

Podemos encontrar estos materiales en los buscadores generales (utilizando filtros), o bien en buscadores específicos como Wikimedia Commons, CC Search o, en el ámbito educativo, en Procomún.

En el caso de secuencias didácticas, podemos encontrarlas en varios repositorios:

Con respecto a materiales multimedia, en el artículo " Bancos gratuitos de imágenes, música, iconos, vídeos y sonidos " ofrecemos muchos sitios webs donde encontrarlos. En cualquiera caso, recuerda comprobar siempre la licencia concreta y cumplir con sus requisitos.

Como hemos visto, en todas las licencias CC aparece la condición BY - Atribución. Esto nos obliga a hacer atribución o reconocimiento al autor de la obra original siempre que utilicemos un material licenciado con CC.

Para ello, debemos indicar:

Título (aunque a partir de la versión 4 de las CC ya no es requerido)

Autor

Fuente

Licencia

Aquí podemos ver muchos ejemplos diferentes de buenas prácticas de reconocimiento de autoría.

Es un sistema muy sencillo y rápido. Con la simple inclusión de una de estas licencias en una obra, el autor da permiso a cualquier usuario a utilizarla bajo las condiciones de la licencia concreta.

En la propia web de Creative Commons ofrecen un asistente en el que te indican la licencia más adecuada a tus preferencias, facilitando además el código e indicaciones sobre cómo incluirlo en tu obra.

Desde Cedec os animamos a utilizar las licencias Creative Commons para compartir vuestros recursos o para buscar materiales para vuestras clases. Para quien quiera profundizar en este tema (quién está detrás de Creative Commons, cuáles son los textos legales de las licencias, cómo combinar materiales con distintas licencias, etc.) os recomendamos consultar los siguientes enlaces:

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Las licencias Creative Commons: qué son, por qué utilizarlas y cómo hacerlo

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Las licencias Creative Commons (CC) son un sistema muy sencillo que nos permite compartir nuestro material con otros usuarios sin necesidad de que tengan que solicitar permiso ni pagar por ello. De la misma forma, podremos utilizar materiales ajenos licenciados con CC libremente, siempre que cumplamos con los requisitos de la licencia.

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Alba Escamez

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Termociclador

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Trabajo grupal UNIDAD 2: Código genético. Grupo 3 1ºLCyB (TARDE)

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Trabajo grupal UNIDAD 2: Código genético. Grupo 3 1ºLCyB (TARDE)

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Francisca Ruano Díaz
Judith Arjona Naranjo
Melania Salmerón Navarro
Sergio Benavent
José Antonio Chamorro

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Trabajo Código genético. Grupo 4. 1ºLCyB 

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Trabajo Código genético. Grupo 4. 1ºLCyB 

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Andrea Rubio
Nayara Estevez
Ricardo Molina
Mar Benavente

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Andrea Rubio, Nayara Estevez, Ricardo Molina, Mar Benavente (1)

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Trabajo grupal UNIDAD 2: Código genético. Grupo 2 1ºLCyB

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Trabajo grupal UNIDAD 2: Código genético. Grupo 2 1ºLCyB

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Andrea Peinado Ortega
Julia Mich
Francisco Moreno Resina
Basilisa Fernández Pérez

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Trabajo en grupo Unidad 2 (código genético G1) 1ºLACyB (nocturno)

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Trabajo en grupo Unidad 2 (código genético G1) 1ºLACyB (nocturno)

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Andrea Martín Moya,
Fátima Moreno Kharobi,
Alba García Trujillo,
María de las Mercedes Sánchez Luque.

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microBIO: Además de vacunas, necesitamos test

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En Alemania están a disposición del público en farmacias, supermercados y otras grandes superficies comerciales

Los test para detectar el virus son una herramienta esencial en una situación de emergencia sanitaria, para controlar la COVID-19. Cada tipo de test tiene su función y utilidad. ¿Por qué los test de antígenos se están vendiendo ya en los supermercados de Alemania y aquí todavía ni siquiera están en las farmacias?

¿Cómo funciona un test de antígenos?

Este tipo de test confirman la presencia del virus al detectar sus proteínas o antígenos. Hay distintas técnicas o soportes, pero en definitiva más o menos todos tienen el mismo fundamento. En este ejemplo concreto explicamos cómo funciona un test cromatográfico. Se toma una muestra de la nariz con un bastoncillo o de la saliva, se añaden unas gotas de un reactivo que extrae las proteínas del virus, se mezcla bien durante uno o dos minutos. Con una pequeña pipeta de plástico se colocan dos o tres gotas de la muestra en la ventana "S" ( sample) del dispositivo, y se esperan 15 minutos.

En la ventana "S" hay una pequeña esponja que se empapará con la muestra y los reactivos. La mezcla se moverá por capilaridad por la tira de papel. Ahí también hay dos componentes esenciales: una proteína marcada con látex poliéster de color verde que utilizaremos como control para comprobar que el sistema funciona bien, y un anticuerpo monoclonal contra la glicoproteína de la superficie de la envoltura del virus (la proteína S, spike), marcada en este caso con látex poliéster de color rojo.

En otra zona del dispositivo hay otra ventana con las letras "C" (control) y "T" (test). Ojo, la "C" es de control, ¡no de coronavirus! A esa altura del dispositivo, en "C" hay anticuerpos que se unirán específicamente con la proteína contro l, de forma que esta será capturada por los anticuerpos y quedará fija a ese nivel, dando lugar a una reacción anticuerpo-proteína que se manifestará como una línea de color verde (recuerda que en la proteína iban adheridas unas pequeñísimas bolitas de látex verde). La aparición de una línea verde a nivel de la "C" significa por tanto que el control ha salido bien, que los reactivos del test han funcionado correctamente.

Por otra parte, en la zona del dispositivo donde aparece la "T" hay anticuerpos específicos contra la proteína S del virus. Si en la muestra había partículas virales, éstas se habrán unido a los anticuerpos marcados con látex poliéster de color rojo. Este complejo proteína del virus-anticuerpo marcado, se moverán por capilaridad hasta encontrarse con el otro anticuerpo contra la proteína del virus a nivel de la "T". Se formará así un complejo tipo sándwich anticuerpo-antígeno-anticuerpo marcado, que dará lugar a una línea de color rojo a nivel de "T". Si en la muestra no había virus, no se dará toda esta reacción y no aparecerá ninguna banda a nivel de la "T".

En conclusión, los resultados que podemos obtener son:

- No aparece ninguna banda, ni en "C" ni en "T": el control no ha funciona bien, luego el test es INVÁLIDO, no podemos concluir ningún resultado, ni negativo ni positivo.

- Banda de color verde en "C" y nada en "T": el control funciona bien y no se detectan antígenos del virus, resultado NEGATIVO.

- Banda de color verde en "C" y banda de color rojo en "T": el control funciona bien y se han detectado antígenos del virus, resultado POSITIVO.

- No aparece la banda de color verde en "C", pero sí aparece la banda de color rojo en "T": el control no ha funciona bien, luego el test también es INVÁLIDO, tampoco podemos concluir ningún resultado, ni negativo ni positivo, aunque haya salido la banda de color rojo en "T".

¿Por qué puede salir un resultado INVÁLIDO? Muy probablemente por un problema en los reactivos o mala práctica. Si no aparece la banda de color verde en el control, el test es inválido y no podemos sacar ninguna conclusión, independientemente de lo que salga en "T".

Si me ha salido NEGATIVO, ¿quiere decir que no estoy infectado? No. En la mayoría de los casos, desde que comienza la infección, hay unos días (cuatro o cinco) en los que la cantidad de virus en la muestra puede ser muy pequeña e insuficiente para que los detecte el test de antígenos. El límite de detección de antígenos es mayor que el límite de detección del ARN mediante PCR: hace falta una mayor carga viral para que el test de antígenos detecte al virus. Por lo tanto, el test de antígenos puede salir negativo, pero tú puedas estar infectado, en los primeros días de la infección e incluso ser contagioso. Un test negativo no es garantía de no estar contagiado y de no poder contagiar a otros. Si tienes dudas lo mejor sería repetir el test.

Si me ha salido POSITIVO, ¿qué significa y qué debería hacer? Significa, con una muy alta probabilidad, que estás contagiado con el virus. Tu carga viral es lo suficientemente alta como para que la detecte el test, por lo que además estarás en la fase más contagiosa, puedes transmitir la enfermedad con mucha facilidad aunque no presentes síntomas. Deberías aislarte inmediatamente, avisar a tu centro de salud para que te confirmen el resultado mediante una PCR (un test mucho más sensible) y avisar a tus contactos.

Como acabamos de ver las ventajas del test de antígenos es su rapidez y sencillez, no requiere reactivos caros, ni máquinas ni personal técnico altamente cualificado. Son mucho más baratos que la PCR. Los puedes hacer tu solito en casa. Sin embargo, los test rápidos de antígenos han sido motivo de cierta controversia por su baja sensibilidad comparada con la PCR. Sin embargo, cada vez hay más datos que demuestran su enorme potencial para controlar la pandemia.

¿Por qué pueden ser muy útiles para controlar la pandemia?

La detección del SARS-CoV-2 es fundamental para el control de la enfermedad y se ha basado, principalmente, en la RT-PCR cuantitativa (reacción en cadena de la polimerasa, con transcriptasa inversa). Esta PCR detecta el genoma del virus a partir de muestras nasales o de la farínge y lo amplifica en 30 a 40 ciclos, lo que permite detectar incluso un número mínimo de copias del ARN del virus. La PCR es una prueba clínica muy potente, sobre todo cuando un paciente está o fue recientemente infectado con el SARS-CoV-2. Los fragmentos de ARN del virus pueden permanecer durante semanas después de que se haya eliminado el virus infeccioso, a menudo en personas sin síntomas.

Sin embargo, para las medidas de salud pública, se necesita otro enfoque. El objetivo no es saber si alguien tiene ARN del virus en la nariz, quizá de una infección anterior, sino si es infeccioso en este momento concreto. La mayoría de las personas infectadas con SARS-CoV-2 son contagiosas durante 4 a 8 días. Por lo general, las muestras no contienen virus potencialmente contagiosos (cultivo positivo) más allá del día 9 después de la aparición de los síntomas, y la mayor parte de la transmisión ocurre antes del día 5. Este momento se ajusta a los patrones observados de transmisión del virus (generalmente de dos días antes a 5-7 días después del inicio de los síntomas), de ahí viene la recomendación de los 10 días de aislamiento. Esa ventana de transmisibilidad contrasta con una media de 22-33 días en los que la PCR puede ser positiva (más tiempo con infecciones graves y algo más corto entre individuos asintomáticos). Esto sugiere que 50-75% de las veces que un individuo es positivo por PCR, es probable que sea post-infeccioso (se detectan restos del ARN del virus pero el virus no está activo).

La PCR amplifica, el test de antígenos no

Una vez que el sistema inmunológico ha controlado la replicación del SARS-CoV-2, los niveles de ARN detectables por PCR en las secreciones respiratorias caen a niveles muy bajos cuando los individuos tienen muchas menos probabilidades de infectar a otros. Las copias de ARN restantes pueden tardar semanas, incluso ocasionalmente meses, para desaparecer, tiempo durante el cual la PCR permanece positiva. Lógicamente, es esperable que una prueba como la de antígenos que detecta a alguien que pueda ser contagioso tenga una sensibilidad del 30-40% en comparación con la PCR, cuando se analiza una muestra aleatoria de personas asintomáticas.

Aunque los test de antígenos tienen una menor sensibilidad analítica que la PCR (requieren más cantidad de virus para que den positivo), su habilidad para detectar individuos con alta carga viral y por tanto contagiosos es tan alta como la PCR. Su especificidad (la capacidad de identificar correctamente los que no están infectados), es comparable a la PCR.

(Fuente: @michaelmina_lab)

En esta imagen se resume un trabajo en el que se compara el resultado del test de antígenos, la PCR (el valor de Ct o ciclo en el que sale positivo) y el cultivo, que permite detectar la viabilidad del virus, en personas asintomáticas. Demuestra que el test de antígenos es capaz de detectar el 100% de las muestras PCR positivas con cultivo positivo, las que mayor carga viral tienen (Ct más bajo) y más contagiosas son (porque el virus está activo: son cultivo positivo).

Por lo tanto, si lo que quieres es identificar a un paciente que está infectado por el virus, para establecer si está enfermo o no en personas con o sin síntomas, necesitas una prueba muy sensible (que no de falsos negativos) y especifica (que no de falsos positivos). En este caso la prueba de elección sería la PCR, sin duda.

Pero si lo que buscas es detectar rápidamente a las personas más contagiosas (con o son síntomas) para evitar transmisiones, la PCR (una prueba cara y que tarda una media de 24-48 h) quizá no sea la mejor opción. En este caso el objetivo no es diagnosticar la enfermedad, sino detectar a los más contagiosos, los que tienen más virus. Para esto, el test de antígenos es la solución. Sí, es menos sensible que la PCR, pero su baja sensibilidad se compensa con la frecuencia de uso, por ser rápido, sencillo y barato. Además, recientemente se ha confirmado que la detección de SARS-CoV-2 en saliva tiene una alta tasa de concordancia con la de las muestras nasofaríngeas, y lo que es más importante que sólo el 2% de los individuos llevan el 90% de los viriones que circulan dentro de las comunidades (super-portadores y posiblemente también super-contagiadores), por eso es tan importante detectarlos a tiempo.
¿Qué es mejor un test con una sensibilidad del 100% como la PCR o un test de antígenos con una sensibilidad menor pero mucho más rápido y que puedo repetir frecuentemente? Para detectar los contagiosos, un test rápido y frecuente
Además de los test de antígenos, hay ya otro tipo de tecnologías que permiten desarrollar test rápidos que se podrían hacerse de uso doméstico. Por ejemplo, la denominada amplificación isotérmica (LAMP, del inglés, loop-mediated isothermal amplification) está basada en técnicas moleculares y, a diferencia de la PCR, requiere sólo de una temperatura constante para la reacción de amplificación e identificación de un fragmento del material génico del virus. Este test es mucho más rápido que la PCR (menos de 30 minutos). Es también una técnica muy sensible. Ya hay varias compañías que comercializan esta tecnología en forma de kits portátiles. Desde Noviembre de 2020 la FDA aprobó el primer autotest para uso domiciliario basado en esta técnica, denominado Lucira, aunque todavía no está disponible comercialmente y se necesitará receta médica para su uso.

Vacunar, vacunar, vacunar y ... test, test, test

Ya se venden en Farmacias test de embarazo, de ovulación, auto-test de VIH, y tiras reactivas para detección de nivel de glucosa (sin receta); test de anticuerpos Covid, test para celiacos, tiras infección orina (con receta), y auto-inyectables de insulina, heparina y glucagón (con receta). No solo las vacunas, sino también los test de antígenos domésticos para SARS-CoV-2 podrían cambiar el rumbo de la pandemia.

Es cuestión de tiempo, pero acabaran en el mercado. Mi apuesta es inundar el mercado con auto-test de antígenos, hacer muchos y muy frecuentemente. Que se vendan en cualquier lugar, como ya ocurre en otros países, y que los podamos hacer de manera frecuente, varios a la semana para monitorizar el acceso a colegios, universitarios, centros sanitarios, lugares de ocio, reuniones, residencias, .... Si sale negativo, como ya hemos dicho, no quiere decir que no puedas contagiar. Pero si sale positivo, aislamiento inmediato.

También te puede interesar:

- Test, test, test: los tres test del coronavirus

Puedes consultar:

Clarifying the evidence on SARS-CoV-2 antigen rapid tests in public health responses to COVID-19. Mina, MJ,. y col. The Lancet. February 17, 2021.

Diagnostics for SARS-CoV-2 infections. Kevadiya, BD., y col. Nature Materials, February 15, 2021.

Comparison of Saliva and Nasopharyngeal Swab Nucleic Acid Amplification Testing for Detection of SARS-CoV-2. A Systematic Review and Meta-analysis. Butler-Laporte, G., y col. JAMA Intern Med. 2021;181(3):353-360.

NOTA (7/4/2021): La FDA ya autorizó al menos tres tipos de test de antígenos. En Alemania ya se venden en los supermercados, lo mismos en Portugal (sin IVA, por cierto). En Francia, Bélgica, Austria y Suiza se vende en farmacias sin receta. Reino Unido va a distribuir dos por semana gratis. El precio de un test en un laboratorio privado puede superar los 30 euros. En otros países se comercializan a 4-5 euros el test (aproximadamente).

Lista de test rápidos de antígenos evaluados por la Unión Europea

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En Alemania están a disposición del público en farmacias, supermercados y otras grandes superficies comerciales Los test para detectar el virus son una herramienta esencial en una situación de emergencia sanitaria, para controlar la COVID-19. Cada tipo de test tiene su función y utilidad.

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GeneArt CRISPR Nuclease Vectors | Thermo Fisher Scientific - ES

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The CRISPR-Cas9 system is a two-component system, consisting of the target-specific CRISPR gRNA and Cas9 nuclease. For genome editing to be successful, both the Cas9 and gRNA need to be expressed together in the target cells. We offer the necessary tools for the design and engineering of target-specific gRNA and Cas9 nuclease expression plasmids enabling you to pursue different experimental strategies.

Products for CRISPR-Cas9 design

For designing your vector you may choose between two separate plasmids for Cas9 and gRNA, respectively, or a single plasmid for both genes:

Plasmid for Cas nuclease expression obtained from open-access resources (e.g. Addgene, the nonprofit global plasmid repository)

gRNA cloning vector obtained from open-access resources (e.g. Addgene, the nonprofit global plasmid repository)

GeneArt CRISPR Nuclease vector for cloning Cas9 and gRNA together

All-in-one plasmid system

Transfect, enrich, screen, and publish-using our GeneArt CRISPR Nuclease Vector Kit. The CRISPR Nuclease system offers a ready-to-use, all-in-one expression vector system with a Cas9 nuclease expression cassette and a guide RNA cloning cassette for fast cloning of a target-specific crRNA. This system allows you to edit and engineer the genomic locus of your choice in a sequence-specific manner from a single plasmid. After relevant targets have been identified with GeneArt CRISPRs, the biologically-relevant mutations can be validated with GeneArt TALs to reduce potential off-targeting.

GeneArt CRISPR Nuclease Vector Kits

GeneArt CRISPR Nuclease Vector Kits are reporter vector systems for expression of the functional components needed for CRISPR-Cas genome editing. The kits make it easy to express noncoding guide RNA (including crRNA and tracrRNA), using a plasmid vector that also expresses Cas9 endonuclease.

The GeneArt CRISPR Nuclease Vector with OFP (orange fluorescent protein) for flow cytometry-based sorting of crRNA-expressing cell populations, whereas GeneArt CRISPR Nuclease Vector with CD4 enables bead-based enrichment of crRNA-expressing cells.
GeneArt CRISPR Nuclease Vectors. (A) GeneArt CRISPR Nuclease: OFP Reporter Plasmid map and features of GeneArt CRISPR Nuclease: OFP Reporter. The vector is supplied linearized between nucleotides 6,732 and 6,752, with 5 bp 5´ overhangs on each strand as indicated. (B) GeneArt CRISPR Nuclease: CD4 Enrichment Plasmid map and features of GeneArt CRISPR Nuclease: CD4 Enrichment. The vector is supplied linearized between nucleotides 7,336 and 7,355, with 5 bp 5´ overhangs on each strand as indicated. The linearized GeneArt CRISPR Nuclease Vectors provide a rapid and efficient way to clone double-stranded oligonucleotides encoding a crRNA representing a desired target into an expression cassette that allows sequence-specific targeting of the Cas9 nuclease.

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GeneArt CRISPR Nuclease Vectors | Thermo Fisher Scientific - US

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The CRISPR-Cas9 system is a two-component system, consisting of the target-specific CRISPR gRNA and Cas9 nuclease. For genome editing to be successful, both the Cas9 and gRNA need to be expressed together in the target cells. We offer the necessary tools for the design and engineering of target-specific gRNA and Cas9 nuclease expression plasmids enabling you to pursue different experimental strategies.

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Encendiendo y apagando genes con CRISPR - Gen-Ética

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Encendiendo y apagando genes con CRISPR - Gen-Ética

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Las maravillosas herramientas CRISPR-Cas de edición genética no dejan de sorprendernos, por su tremenda versatilidad y aplicabilidad en muchos campos de la biología, siempre y cuando se trate, de alguna manera, de interactuar con el material genético, con las moléculas de ácidos nucléicos, sean estas ADN o ARN.

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Grupo B 1º Lab 19/20- Anomalias cromosómicas

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Grupo B 1º Lab 19/20- Anomalias cromosómicas

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TECNICA PCR COMO METODO DE DIAGNOSTICO EN ICTIOPATOLOGIA

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Factores que afectan a la hibridación

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Poster Grupo 2 Factores que influyen en las técnicas de hibridaci

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Poster Grupo 2 Factores que influyen en las técnicas de hibridaci

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3 Trimestre

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Factores que influyen en las técnicas de hibridación Grupo 2

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Factores que influyen en las técnicas de hibridación Grupo 2

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3 trimestre

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FACTORES QUE INFLUYEN EN LAS TÉCNICAS DE HIBRIDACIÓN

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3ºtrimestre

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3ºtrimestre

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Poster de las bases metodológicas de la hibridación- Grupo 1

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Bases metodológicas de la hibridación poster grupo 1

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Bases metodológicas de la hibridación- Grupo 1

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Bases metodológicas de la hibridación grupo 1

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Grupo 4

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Errores electroforesis Karolina y Nieves Grupo 7

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Errores electroforesis Karolina y Nieves Grupo 7

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Laboratorio de Biología Molecular,LAURA FERNANDEZALBA ESCAMEZANAIS ESPINOSARAQUEL GARCIA,EMPEZAR,INDICE,PERSONAL,EQUIPOS,ÁREAS,SEGURIDAD,TECNICAS,GESTIÓN DE RESIDUOS,PROCESOS,En el laboratorio de biologia molecular se realiza:,1. TECNICAS,REACCION EN CADENA DE LA POLIMERASA (RCP),SECUENCIA DEL GENOMA,SECUENCIACION NGS,PIROSECUENCIA,HIBRIDACION DE ONDAS DE ADN,HIBRIDACION CON SONDAS DE RAPD,HIBRIDACION CON SONDAS DE RFLP,2.EL EQUIPAMIENTO,ESPECIFICOEl termociclador.El equipo de electroforesis.El documentador de geles.Tambien aparatos automáticos como:Extracciones de ácidos nucleicos.Secuenciadores.GENERICOCabina de bioseguridad.Sistema de purificacion de agua.El espectrofotómetro.Microscopio de luz trasmitida y fluorescencia.Autoclave.Incubador o estufa.Baño termostático, termobloque y placa calefactora.Centrifuga y microcentrifugadora.Neveras y congeladores de -20ºC y -0ºCOtros equipamientos.,.,EL TERMOCICLADOR,DOCUMENTADOR DE GELES,EQUIPO DE ELECTROFORESIS,E Q U I P O E S P E C I F I C O,CABINA DE BIOSEGURIDAD,MIRCROSCOPIO DE LUZ TRANSMITIDA Y FLUORESCENCIA,ESPECTROFOTOMETRO,SISTEMA DE PURIFICACION DEL AGUA,AUTOCLAVE ,INCUBADORA O ESTUFA,E Q U I P O · G E N E R I C O,BAÑO TERMOSTÁTICO, TERMOBLOQUE Y PLACA CALECFATORA ,OTROS EQUIPOS,NEVERA Y CONGELADORES DE -20ºC y -80ºC ,CENTRÍFUGA Y MICROCENTRÍFUGA,3.EL PERSONALUn laboratorio de biología molecular debe prescindir del siguiente personal : * Personal técnico + Personal facultativo + Personal administrativo,+ info,+ info,Sala Post-PCR,Sala de PCR,Fase Post-Analítica,Fase Pre-Analítica,Procesos de la PCR,Fase Analitica,Sala de Preparación,+ info,+ info,+ info,En el laboratorio de biología molecular diferenciamos las áreas en: ,5. AREAS,+ info,EXTRACCION DE ACIDOS NULEICOS,qPCR,SECUENCIACION SANGER,SECUENCIACION MASIVA (NGS),TECNOLOGIAS EMERGENTES,BIOINFORMATICA,La seguridad en los laboratorios de biología molecular, citogenética y cultivos celulares hace referencia a la prevención de la exposición del personal a agentes nocivos y también a impedir la liberación de estos al exterior.,6.LA SEGURIDAD EN EL LABORATORIO,BIOSEGURIDAD,SEGURIDAD QUIMICA,FICHA DE SEGURIDAD,MANUAL DE SEGURIDAD,EQUIPAMIENTO Y NORMAS DE SEGURIDAD,CLASIFICARENVASARETIQUETARALMACENAR,Tratamiento integral de residuos,Garrafas de polietileno de alta densidad,Envases de polietileno,Envases,Cajas estancas de polietileno ,Bidones de polietileno,Envases de cartón rígido,Lorem ipsum dolor sit amet, consectetuer adipiscing elit, sed diam nonummy nibh euismod tincidunt ut laoret dolore magna aliquam erat volutpat. Ut wisi enim ad minim veniam, quis nostrud exerci tation ullamcorper suscipit lobortis nisl ut aliquip ex ea commodo consequat. Duis autem vel eum iriure dolor in hendrerit in vulputate velit esse. Usu ea mundi tincidunt, onium virtute aliquando.,Todo envase de residuos peligrosos debe estar correctamente etiquetado tanto con la indicación del contenido como del productor. Los envases y contenedores estarán convenientemente etiquetados con el nombre del o de los residuos que contienen "indicando composición en caso de mezcla de componentes, siempre que sea posible", departamento, laboratorio o edificio, material y volumen del envase que los contiene. ,Información del riesgo.,GESTIÓN DE RESIDUOS,Se denomina gestión de residuos a la recogida, el transporte y tratamiento de los residuos, incluida la vigilancia de estas operaciones.El manejo de residuos en el laboratorio está regulado por la Ley 22/2011, de 28 de Julio, de residuos y suelos contaminados.Esta ley tiene por objeto regular la gestión de los residuos. Lo hace impulsando medidas que prevengan su generación y mitiguen los impactos adversos sobre la salud humana y el medio ambiente, mejorando la eficiencia en el uso de los recursos. ,+ info,ALMACENAMIENTO,El principal riesgo en la recogida selectiva de residuos son las posibles reacciones de incompatibilidad, por lo que se debe tener en cuenta que éstos no deben mezclarse.,INCOMPATIBILIDADES

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DISEÑO LABORATORIO by rayaiblue on Genially

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Electroforesis ADN. Resolución de problemas

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Resolución de problemas de electroforesis

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Errores electroforesis grupo 8 (Ana Cristina y Rut)

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Errores electroforesis grupo 8 (Ana Cristina y Rut)

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Electroforesis ADN. Resolución de problemas

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Grupo de " Las nuevas"
Biología y citogenética

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Ana María López Cara
Paula Nuñez Gómez
Paula López Amat
Loubna Boutir Oukasse

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Marta Pardo González
Ariadna Ruiz Jiménez
Carlos Pérez García

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Yolanda
Rocio
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Electroforesis Grupo A-C

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Cabina de flujo laminar

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LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN,SECCIÓN 06,LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN,1. Apagar la lámpara UV y el flujo y encender la luz.2. Retirar todo el material que haya en el interior de la cabina.3. Quitar las planchas o bandejas que hay en el interior4. Limpiar a fondo el interior de la cabina, las planchas obandejas y la tapa con gasas impregnadas en agua destilada y una gota dedesinfectante. Si fuera necesario se puede añadir lejía diluida a la mezcla, pero noconviene abusar de la lejía para prevenir la corrosión de la superficies.5. Aclarar con gasas empapadas en agua destilada todos los componentes y elinterior de la cabina.6. Secar todo con gasas.7. Desinfectar todos los componentes con etanol al 70% y secarlo con papel.8. Colocar las planchas o bandejas dentro de la cabina y volver a rociar con etanol ysecar.9. Introducir el material que vaya a permancer en el interior de la cabina10. Colocar la tapa en la cabina y encender la lámpara UV, dejándola actura entre 1-2h.,FUNCIONAMIENTO,SECCIÓN 05,FILTROS HEPA,SECCIÓN 04,PARTES,SECCIÓN 03,¿CÓMO FUNCIONA?,SECCIÓN 02,CABINA DE FLUJO LAMINAR,Índice,¿CÓMO FUNCIONA?,FILTROS HEPA,FUNCIONAMIENTO,¿QUÉ ES?,PARTES,LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN,¿QUÉ ES?,SECCIÓN 01,CABINA DE FLUJO LAMINAR,¿QUÉ ES?,Las cabinas de seguridad biológica son equipos que proporcionan una barrera decontención para trabajar de forma segura y en condiciones de esterilidad. Son equiposdiseñados para mantener un área libre de partículas o de probables contaminantesdenominada zona de trabajo.,CABINA DE FLUJO LAMINAR,¿CÓMO FUNCIONA?,Su eficacia se consigue mediante la combinación de elementos electromecánicos y (ventiladores, filtros,etc.) y elementos físicos(diferencias de presiones,etc.),+ info,Consta de unos elementos básicos:-PANEL FRONTAL TRANSPARENTE, estabilidad del flujo laminar.-REJILLA FRONTAL, impide el escape de contaminantes por la ventana de trabajo.-UN FILTRO HEPA, aire libre de partículas y microorganismos.-SEGUNDO FILTRO HEPA, elimina al exterior el resto de aire.,PARTES DE UNA CABINA DE FLUJO LAMINAR,+ info,- ¿ Qué son ? : Son filtros de aire de alta eficacia que retienen partículas de tamaño superior a 0,2 micras con una eficacia del 99,995%- ¿ Cómo funcionan? parte del aire impulsado se fuerza a través de este filtro, generando flujo laminar de partículas y microorganismos. Además consta de un segundo filtro HEPA más pequeño por el que se elimina al exterior el resto de aire impulsado .,- ¿ Dónde están situados? El primer filtro HEPA: forma el techo de la cabina.El segundo filtro HEPA : esta situado por encima del primero.- ¿ Para qué sirven? Un filtro Hepa sirve para retener bacterias , hongos , esporas y levaduras , evitando la contaminación de los cultivos por estos microorganismo presentes en el medio ambiente.,Filtro HEPA,Además de los básicos encontramos:-TOMA DE ELECTRICIDAD-TOMA DE GAS-TOMA DE VACÍO-REGULADOR DE FLUJO-PANEL DE CONTROL:ILUMINACIÓNBOTÓN APAGADO/ENCENDIDOLÁMPARA UV,+ info,HAY VARIOS TIPOS DE CABINAS DE FLUJO LAMINAR PERO LOS ELEMENTOS BÁSICOS SON COMUNES ENTRE ELLAS,Funcionamiento de una Cabina de Flujo Laminar,Encender lámpara UV 15-20 minutos antes de utilizar la cabinaApagar lámpara UV, encender lámpara de luz blanca y encender el flujo de aire laminar.Limpiar la superficie con una disolución jabonosa y luego desinfectar con etanol al 70%Colocar todos los materiales previamente rociados con etanol dentro de la cabina de manera que se respete el flujo de trabajo.Una vez que se ha terminado se recoge todo el material utilizado y todos los reactivosSe limpia la caina con agua y etanolCerrar la tapa, apagar el flujo laminar y dejar encendida la luz UV unos 10-15 minutos.,ANAIS ESPINOSA VERAANA GIL MUÑOZLAURAMARINA ARIAS MARTÍNEZ,¡Muchas gracias!,¡Eureka!

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CABINA DE FLUJO LAMINAR by geniallylaboratorio2020 on Genially

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LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN,SECCIÓN 06,LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN,1. Apagar la lámpara UV y el flujo y encender la luz.2. Retirar todo el material que haya en el interior de la cabina.3. Quitar las planchas o bandejas que hay en el interior4.

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Por: Nerea Toribio, Rocío Martínez, María Vizcaino, Carlos Pérez y Marta Pardo

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EL EQUIPO DE ELECTROFORÉSIS

Realizado por:Nerea Toribio GonzálezRocío Martínez MartínezMaría Vizcaíno SalvatierraMarta Pardo GonzálezCarlos Pérez García

Índice

¿Qué es y cómo funciona la electroforesis?Partes del equipo¿Por qué es importante?Técnicas de electroforesisProcedimiento.¿ Qué es un gel?¿Cómo se mueven los fragmentos de ADN a través del gel?Visualización de los fragmentos de ADNFactores que afectan a la electroforesisPrecauciones de uso/ Medidas de reducción y control de usoActuación ante posibles derramesAdvertencias y recomendacionesGestión de residuosAplicacionesTipo de electroforesis Bibliografía

¿Qué es y cómo funciona la electroforesis?

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La electroforesis es una que se emplea en los labaratorios para separar el ADN, el ARN y otros biomoléculas en base a su tamaño y carga electrónica.Se utiliza una corriente para mover las moléculas y separarlas a través de un gel. Los poros del gel actúan como un colador, permitiendo que las moleculas más pecheñas se muevan más rapido que las grandes.

Cubeta de electroforesis

Fuente de alimentación

Soporte

Solución tampón

Aplicador

Colorante

PARTES DEL EQUIPO

Son sustancias químicas cuya función es evidenciar las bandas obtenidas durante la electroforesis.El colorante utilizado dependerá de la naturaleza de las sustancias que se pretenden teñir.

Es un dispositivo ideal para depositar la muestra sobre el soporte en forma de banda. Esta banda puede ser de diversos tamaños según el aplicador que utilicemos. En la actualidad existen aplicadores múltiples que permiten depositar varias muestras a la vez.

Es el medio físico en el que ocurre la separación de moléculas. Pueden ser de dos tipos. Por una parte, están los soportes de clase I o no restrictivos, que permiten la separación molecular según la carga eléctrica neta de las moléculas. Pueden ser de papel de filtro o de cellogel (acetato de celulosa).Por otro lado, tenemos los soportes de clase II o restrictivos, que permiten la separación molecular según la carga eléctrica neta y el tamaño de las moléculas. Pueden ser de gel de almidón, gel de agarosa o gel de poliacrilamida.

Proporciona la corriente eléctrica necesaria, transformando la corriente alterna de la red eléctrica en corriente continua. Permite la regulación del voltaje para crear la diferencia de potencial óptima y deseada en la cubeta de electroforesis.

Es una solución amortiguadora o buffer. Ajusta el medio al pH más adecuado para que se ionicen las moléculas que se pretenden separar. Estas soluciones tampón permiten que se mantenga el pH constante en todo momento. De este modo la carga eléctrica también se mantendrá constante durante la electroforesis.

Es el recipiente donde se lleva a cabo la técnica de electroforesis. Consta de dos cavidades separadas, donde se localizan los electrodos y en las que se vierte la solución tampón. Además, está conectada a la fuente de alimentación mediante dos cables. Un cable negro para el cátodo y un cable rojo para el ánodo.En su interior se sitúa el puente en el que se aloja el soporte. Dicho puente consta de un diseño preparado para que el soporte mantenga una extensión óptima gracias a una especie de pinzas.

¿Por qué es importante la electroforesis?

Es útil para compara patrones de bandas de diferentes muestras biológicas.Separa ácidos nucleicos o proteínas.Determina el peso molecular de una proteína, el número de cadenas polipeptídicas y el punto isoeléctrico.

Técnicas de electroforesis

pH fijado a la estructura del gelpH = punto isoeléctrico

Isoelectroenfoque

Electroforesis de campo pulsante

Electroforesis preparativa

Obtención de cantidades grandes de muestra

Inmunoelectroforesis

Separación electroforética con detección por inmunodifusión.

Proceso:

Se emplean geles de agarosa al 1%, pero se altera periódicamente la orientación del campo eléctrico aplicado, activando alternativamente dos pares de electrodos. El frecuente cambio de dirección del campo eléctrico consigue que las moléculas se desplieguen y avancen a través de los poros en conformación extendida. A mayor tamaño, se reorientan con más dificultad, por lo que avanzan más despacio.

Procedimiento

Consiste en aplicar una corriente a través de un gel que contiene moléculas, se desplazaránen en diferentes direcciones y velocidades, separará los fragmentos de ADN por su tamaño.La electroforesis nos permite ver cuántos fragmentos de ADN están presentes en una muestra y lo grandes que son unos con respecto a otros.

¿Qué es un gel?

Suelen estar hechos deagarosa en un extremo, tiene unos pozos, donde se colocarán las muestras de ADN.El gel se colocarse en una cámara, un extremo de la cámara se conecta a un electrodo positivo y el otro extremo a un electrodo negativo. El extremo del gel que tiene los pozos se coloca hacia el electrodo negativo y el extremo sin pozos (hacia donde migrarán los fragmentos de ADN) se coloca hacia el electrodo positivo.

La cámara se llena con solución que contiene sales que conducen la corriente.

¿Cómo se mueven los fragmentos de ADN a través del gel?

Las muestras de ADN se colocan en los pozos, uno se reserva para el marcador de peso molecular (contiene fragmentos de ADN conocidos).Se aplica energía eléctrica y empieza a fluir corriente eléctrica en el gel.Su esqueleto de azúcares-fosfato le otorgan una carga negativa a las moléculas de ADN, comienzan a moverse a través de l gel hacia el polo positivo.Cuando pasa corriente por el gel, se dice que el gel está corriendo.Los fragmentos más cortos de ADN estarán más cerca del extremo positivo y los más largos del extremo negativo, los fragmentos más pequeños podrían correr hasta salirse del gel

Visualización de los fragmentos de ADN

Fragmentos se han separado, podemos saber el tamaño de las bandas examina dola junto a una "escala" tamaño conocido.Una "línea" de ADN llama banda, cada una contiene ADN del mismo tamaño que han viajado a la misma posición un fragmento único de ADN no sería visible el un gel.Cuando un gel se tiñe con un pigmento que se une al ADN y se coloca bajo luz UV, los fragmentos de ADN brillarán, lo cual nos permite ver el ADN presente en el gel.

La banda brillante de este gel tiene un tamaño aproximado de 700 pares de bases (pb).

Factores que afectan a la electroforesis

Flujo electroosmótico: Puede influir en la movilidad electroforética, dependiendo del soporte utilizado.Difusión: La extensión de la muestra sobre el soporte puede afectar a la resolución de la separación. Puede suceder con facilidad en muestras donde se pretenden separar moléculas de pequeño tamaño.Adsorción: Según el material del soporte, el poder de adsorción variará y modificará el poder de separación de las moléculas.Temperatura: La corriente eléctrica aplicada al sistema electroforético aumenta la temperatura. Con el aumento de temperatura se produce una evaporación que aumenta la concentración de las moléculas en la solución tampón.Otros factores: También influyen otros factores como el voltaje aplicado, el tipo de tampón utilizado o el tiempo de duración de la electroforesis.

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-Siempre apague la fuente de poder antes de retirar la tapa de la cámara de electroforesis.-No hale los cables para destapar la cámara.-No esterilizar la cámara ni en la autoclave ni en procesos que utilicen calor.-No utilizar solventes orgánicos o alcoholes en la cámara.

PRECAUCIONES DE USO

MEDIDAS DE REDUCCIÓN Y CONTROL DEL RIESGO

Medidas sobre el agente químico

Medidas sobre el proceso y el local

C

Medidas sobre el método de trabajo y la organización

La sustitución del bromuro de etidio en forma de polvo por las disoluciones diluidas preparadas comercialmente elimina la posibilidad de emisión de polvo al ambiente y por tanto, los riesgos de su inhalación.

Extracciones localizadasEn caso de que sea imprescindible utilizar bromuro de etidio en polvo, sólo se debe manipular dentro de una cabina extractora con filtros de alta eficacia para partículas (HEPA).Ventilación generalEl entorno de trabajo debe estar bien ventilado, con un sistema que garantice la renovación del aire.

-Se recomienda la adquisición de las disoluciones de bromuro de etidio existentes en el mercado que presenten las concentraciones más bajas compatibles con el trabajo a realizar.-Las disoluciones de bromuro de etidio no se adicionarán a la disolución de agarosa hasta que la temperatura de ésta sea inferior a 55 ºC.-Las disoluciones de bromuro de etidio se conservarán refrigeradas (entre 2 ºC y 8 ºC) para evitar la formación de vapores.-En la zona de utilización se mantendrá la cantidad mínima imprescindible para cubrir las necesidades de una jornada de trabajo.-Todos los envases que contengan bromuro de etidio o sus residuos, deben mantenerse correctamente cerrados y etiquetados. Se dispondrá de la Ficha de Datos de Seguridad.-El material de laboratorio no desechable que esté en contacto con bromuro de etidio se mantendrá aislado y debidamente marcado, para reutilizarlo exclusivamente con este fin.-Todas las superficies de trabajo deben limpiarse diariamente, al finalizar las tareas, con paños limpios humedecidos con alcohol.

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Actuación frente a posibles derrames

Paso 1

Paso 2

El trabajador se protegerá con bata de laboratorio, guantes desechables, gafas de seguridad, en caso de derrames sólidos, mascarilla filtrante.

En primer lugar, si el derrame producido es de polvo, se limpiará cuidadosamente con paños húmedos; si se trata de líquido, se absorberá con paños secos.

A continuación, la zona se limpiará con agua y jabón, y después con alcohol al 70%.

Paso 3

La operación se repetirá varias veces y se comprobará si quedan residuos de bromuro de etidio utilizando una lámpara UV.

Paso 4

Si se produce un vertido se procederá de la siguiente forma:

DAÑOS PARA LA SALUD: -Electrocución por contacto directo o indirecto, generado por todo aparato que tenga conexión eléctrica.- Inflamación o explosión de vapores inflamables por chispas o calentamiento del aparato eléctrico.La principal vía de entrada del bromuro de etidio en el organismo es la vía inhalatoria. Por vía digestiva es nocivo, aunque la ingestión accidental es muy poco probable.-El bromuro de etidio en forma de polvo es muy tóxico por inhalación.-Está clasificado como mutágeno de categoría 2.-La inhalación de polvo puede irritar las vías respiratorias.-El contacto con la piel puede provocar irritaciones, dermatitis, decoloración de la piel y manchas de color púrpura.-Puede provocar irritación, enrojecimiento y dolor ocular.

Advertencias

No golpear la cubeta del gel cuando la tapa esté en su lugar

Llevar guantes

No utilizar líquidos inflamables

Los equipos deben tratarse con pirocarbonato de dietilo antes del uso

Moldear los geles con formaldehido en una campana y retirar los peines cuando haya endurecido el gel

y

Recomendaciones

No exponer disolventes orgánicos ni el equipo a temperaturas >60ºC

No limpiar con productos abrasivos

Tratar con cuidado al pirocarbonato de dietilo, es cancerígeno

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GESTIÓN DE RESIDUOS

Los residuos sólidos contaminados con bromuro de etidio (incluidos los geles, puntas de pipeta, EPI, materiales empleados en la recogida de derrames, etc.), se gestionarán de acuerdo con la normativa de residuos tóxicos.Las disoluciones de bromuro de etidio deben ser filtradas con carbón activo antes de eliminarlas por el desagüe. El carbón activado que se utilice se gestionará como el resto de residuos sólidos contaminados.

Los productos de residuos peligrosos deben estar bien separados y no mezclarlos, para evitar el aumento de su peligrosidad o para no dificultar su gestión. Además hay que envasar y etiquetar según la normativa los recipientes que los contengan y llevar un registro de los mismos.Como norma general, los residuos se recogen en:-Contenedores para los residuos sólidos.-Garrafas en caso de residuos líquidos.

Aplicaciones

Aplicaciones en la medicina forense.Proyecto genoma humano.Investigación de proteínas y mutaciones geneticas.Importante para la conprensión de los genes y las proteínas.

Electroforesis en gel de poliacrilamida

Electroforesis en geles de gradiente

Electroforesis en gel de agarosa

Electroforesis capilar

Electroforesis bidimensional

TIPOS DE ELECTROFORESIS

Se utiliza para la separación de proteínas y, al igual que el gel de agarosa, permite la separación de las moléculas en función de su tamaño. El tamaño del poro es modificable en su creación variando la concentración de polímeros de acrilamida. Las bandas resultantes se revelan con el colorante Azul de Coomassie.

El gel de agarosa es un buen soporte electroforético. Además, su naturaleza le otorga la característica de poder separar las moléculas en función de su tamaño.Este gel está constituido por una matriz tridimensional de fibras poliméricas. La matriz, que retarda el paso de las moléculas, figura embebida en una gran cantidad de líquido.

La electroforesis bidimensional es una técnica resultante de la combinación de un isoelectroenfoque y una electroforesis en gel de poliacrilamida con SDS. Los campos eléctricos utilizados son perpendiculares, formalizando las dos dimensiones de la técnica

Esta técnica difiere bastante de las anteriores. El soporte es distinto, ya que utiliza capilares de sílica fundida cubiertos con una capa de polimina. También lo es la detección y cuantificación, ya que corre a cargo de detectores específicos, que pueden ser de luz ultravioleta, de fluorescencia, un espectrómetro de masas...

Se emplea para la identificación de mutaciones que afectan al patrón de migración del ADN en esas condiciones de electroforesis. La presencia de la mutación se detecta mediante comparación del punto de desnaturalización de la muestra "problema" con la secuencia original.

Bibliografía

https://www.iztacala.unam.mx/rrivas/NOTAS/Notas5Diagnostico/metelectrohttp://biomodel.uah.es/tecnicas/elfo/inicio.htmhttps://bvs.ins.gob.pe/insprint/SALUD_PUBLICA/NOR_TEC/38.pdfhttp://khanacademy.org/gel-electrophoresisttps://www.genome.gov/es/genetics-glossary/Electroforesis

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El equipo de Electroforésis by laboratoriog2biologia on Genially

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EL EQUIPO DE ELECTROFORÉSIS Realizado por:Nerea Toribio GonzálezRocío Martínez MartínezMaría Vizcaíno SalvatierraMarta Pardo GonzálezCarlos Pérez García Índice ¿Qué es y cómo funciona la electroforesis?Partes del equipo¿Por qué es importante?Técnicas de electroforesisProcedimiento.¿ Qué es un gel?¿Cómo se mueven los fragmentos de ADN a través del gel?Visualización de los fragmentos de ADNFactores que afectan a la electroforesisPrecauciones de uso/ Medidas de reducción y control de usoActuación ante posibles derramesAdvertencias y recomendacionesGestión de residuosAplicacionesTipo de electroforesis Bibliografía ¿Qué es y cómo funciona la electroforesis?

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Biología molecular grupo 1

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Biología Molecular Grupo 2

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LABORATORIO DE BIOLOGIA MOLECULAR Y CITOGENETICA

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Proyecto del grupo 3

Feliz Halloween!!!

Andrea, Carme, Rubén, Porti, Lola

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Integrantes: Paola Torres, Alejandra Simón, Paula García y Sandra Castillo

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Juntas transformaremos nuestra curiosidad en grandes logros :)

Cabina de

flujo laminar

GRUPO 4: Alejandra Simón Yedra, Paola Torres Rodríguez, Paula García Manrique y Sandra Castillo RodríguezCURSO: 1º CFGS Técnico de Laboratorio Clínico y BiomédicoMÓDULO: Biología Molecular y Citodiagnóstico.

5. Mantenimiento

6. Pre-Trabajo

3. Tipos

4. Material

Índice

1. Definición

7. Trabajando

9. Situaciones

2. Objetivos

8. Post-trabajo

10. Cosas a tener en cuenta

definición

CABINA DE FLUJO LAMINAR

¿Qué es?

Las cabinas de flujo laminar, son conocidas como cabinas de seguridad biológica.Son equipos que garantizan la existencia de ambientes controlados indispensables en loslaboratorios de cultivo celular

objetivos

CABINA DE FLUJO LAMINAR

Objetivos

+ INFO

Su función es mantener un área libre de partículas o contaminantes (bacterias, levaduras...)que puedan alterar el cultivo o afectar al operador o al medio ambiente

tipos

CABINA DE FLUJO LAMINAR

tipos de CABINAS DE FLUJO LAMINAR

+ INFO

Cabinas de seguridad biológica. Clase II

Cabinas de seguridadbiológica. Clase I

+ INFO

Material

CABINA DE FLUJO LAMINAR

Equipos de medición: Balanzas, termómetros, etc., según el tipo de procedimiento.Refrigeración o calentamiento: Dependiendo del tipo de proceso que se esté realizando.Sistemas de desagüe: Para el manejo adecuado de residuos.

Desinfectantes: Como alcohol isopropílico o soluciones a base de cloro, para limpiar superficies.Materiales de laboratorio:

Tubos de ensayo

Placas de Petri

Pipetas y puntas estériles

Frascos y botellas estériles

Guantes estériles: Para manipular materiales sin contaminarlos.Mascarillas y cofia: Para proteger el ambiente y el operador.

Cabina de flujo laminar: Dispositivo que proporciona un flujo de aire limpio y controlado para evitar la contaminación.

MATERIAL DE LAS CAMPANAS

mantenimiento

CABINA DE FLUJO LAMINAR

MANTENIMIENTO

Se debe tener en cuenta el correcto funcionamiento de la cabina y la protección del producto y del personal, dependen de una correcta calibración del instrumento, el punto de calibración debe ser realizado por personal especializado cada 6 a 9 meses para asegurar la protección del usuario y del producto, además es necesario disponer para cada cabina de una ficha de mantenimiento y control situada en un lugar visible que debe constar de:

● Modelo y referencia. ● Fecha de la próxima revisión aconsejada.● Fecha de control. ● Fecha de sustitución de filtro HEPA● Horas de funcionamiento ●Fecha de sustitución del prefiltro.● Velocidad de aire en m/seg. ● Control de los manómetros.● Test D.O.P. Test de Dioctil Ptalato. (Se utiliza para verificar los filtros HEPA)

pre-trabajo

CABINA DE FLUJO LAMINAR

El material tiene que estar bien ubicado , hay que cerrar siempre los tapones de las botellas y rociar los medios de cultivos con etanol.

No se pueden introducir materiales que emitan facilmente partículas,como el algodón.

Cuando estés listo para trabajar en la campana debes esperar 5 minutos.

Se debe introducir en la cabina todo el material que se vaya a utilizar, que debe ser estéril .

Antes de trabajar en la cabina debemos lavarnos las manos y rociarnoslas con etanol al 70% .

También hay que conectar la lampara UVA unos 15-20 min antes de empezar a trabajar y cuando vayamos a hacerlo hay que apagarla.

Es importante desinfectar la superficie de la campana , secando de atrás hacia delante con etanol al 70%.

PRE-TRABAJO

+ INFO

aNTES aaaaaaaN TRABAJAR EN LA

Los desinfectantes tienen que estar dentro de la cabina.

Hay que trabajar con una distribución correcta , de derecha a izquierda , colocando lo que vaya a usar, lo que estoy usando y lo que he rechazado. Y de atrás hacia delante la misma distribución.

Los brazos deben entrar y salir de la cabina lentamente.

Mientras trabajamos en la campana no podemos hablar y no debe haber más de dos personas alrededor.

El material debe ser abierto dentro de la campana, nunca antes.

Hay que separar lo "limpio" de lo "sucio".

No se deben apoyar los codos ni hacer movimientos rápidos al cambiar cosas de sitio .

trabajando

CABINA DE FLUJO LAMINAR

TRABAJando

+ INFO

aNTES aaaaaaaN TRABAJAR EN LA

post-trabajo

CABINA DE FLUJO LAMINAR

Pasos post - trabajo

Apagar el flujo de aire y sacar el material

Inactivar el material biológico con lejía y los tubos del sistema de vacío

Tirar las pipetas al bidón de residuos peligrosos

Descontaminar la superficie con alcohol al 70% y conectar la lámpara UV-C

Lavarse las manos antes de salir de la sala de cultivos

situaciones

CABINA DE FLUJO LAMINAR

No podemos seguir trabajando en la campana

Las células siguen vivas si la incubadora está a 20ºC

Se eliminan

Preguntar si las pueden identificar

Rosa: El medio tiene poco CO₂, el crecimiento es lentoAmarillo: CO₂ superior

Se va la luz

Placas sin identificar

Situaciones

Se eliminan

Placa abierta

Placa de color

Posible contaminación por micoplasmas

Se eliminan

Preguntar si las pueden identificar

Descontaminar con lejía y agua y jabónLavarse bien las manos

Situaciones

Aconsejarle para evitar perder el trabajo de otros y el mío

Células que crecen lento

Condensación de agua

Derrames

Sólo puede estar una persona en la cabina

Mantener los contenedores a un lado de la cabina

Está prohibido meter mecheros Bunsen

Hay que tener cuidado con los micro mecheros activados por contacto

No tener ventiladores cerca

Mala manipulación de otro usuario

10

cosas a tener en cuenta

CABINA DE FLUJO LAMINAR

Cosas a tener en cuenta

10

Gracias

Grupo 4Biología molecular y de citogenética

- Se describe un dispositivo mecánico que fuerza el aire a pasar a través de un filtro HEPA, que puede estar en la parte superior o frontal de la cámara. Este filtro, con una eficiencia del 99.999%, retiene partículas de hasta 0,2 micrómetros. - El aire circula de manera laminar, evitando turbulencias que podrían introducir contaminantes, gracias a la gran superficie del filtro y a la velocidad constante del flujo. - Los filtros HEPA son efectivos para atrapar aerosoles generados durante experimentos con agentes biológicos.

Fundamentos

- Se describe un dispositivo mecánico que fuerza el aire a pasar a través de un filtro HEPA, que puede estar en la parte superior o frontal de la cámara. Este filtro, con una eficiencia del 99.999%, retiene partículas de hasta 0,2 micrómetros. - El aire circula de manera laminar, evitando turbulencias que podrían introducir contaminantes, gracias a la gran superficie del filtro y a la velocidad constante del flujo. - Los filtros HEPA son efectivos para atrapar aerosoles generados durante experimentos con agentes biológicos.

Fundamentos

Su fundamento es similar al de una campana de humos, es una cabina que trabaja a presión negativa y está abierta frontalmente.El aire procedente del local se introduce por la abertura frontal y es extraído al 100% de la misma. El uso de estas cabinas no previene la exposición por contacto a materiales peligrosos. Así como tampoco garantizan la protección, en caso de que se requiera, del producto manipulado.

INFORMACIÓN

Cabina de Seguridad Biológica I

- Se describe un dispositivo mecánico que fuerza el aire a pasar a través de un filtro HEPA, que puede estar en la parte superior o frontal de la cámara. Este filtro, con una eficiencia del 99.999%, retiene partículas de hasta 0,2 micrómetros. - El aire circula de manera laminar, evitando turbulencias que podrían introducir contaminantes, gracias a la gran superficie del filtro y a la velocidad constante del flujo. - Los filtros HEPA son efectivos para atrapar aerosoles generados durante experimentos con agentes biológicos.

Fundamentos

Su fundamento es similar al de una campana de humos, es una cabina que trabaja a presión negativa y está abierta frontalmente.El aire procedente del local se introduce por la abertura frontal y es extraído al 100% de la misma. El uso de estas cabinas no previene la exposición por contacto a materiales peligrosos. Así como tampoco garantizan la protección, en caso de que se requiera, del producto manipulado.

INFORMACIÓN

Cabina de Seguridad Biológica Clase I

Hay 2 tipos de Cabina de Seguridad Biológica Clase II

INFORMACIÓN

Cabina de Seguridad Biológica Clase II

Este tipo de cabinas se desarrolló para proteger a los trabajadores de los materiales manipulados y para al mismo tiempo, proteger dichos materiales de la contaminación externa.El área de trabajo es recorrida por un flujo descendente de aire filtrado estéril (Flujo Laminar Vertical).La protección del trabajador viene dada por la creación de una barrera de aire formada por la entrada de aire desde el local, a través dela abertura frontal, y por el mencionado flujo descendente de aire filtrado estéril.

Los sistemas de filtración de aire HEPA filtran el aire recirculado y extraído, utilizando ventiladores y rejillas para asegurar una presión negativa en áreas contaminadas. El volumen de aire extraído debe igualar al ingresado para prevenir fugas

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Proyecto laboratorio biología molecular. Grupo 2

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Proyecto laboratorio de citogenética grupo 1

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Integrantes: Paola Torres, Paula García, Sandra Castillo y Alejandra Simón

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1.9 Proyecto ABP 1 del RA1 . Global y Grupal